Обзор литературы, анализ исследований. Тенденции.
И.Р. Мельник
Белорусская медицинская академия последипломного образования
В последние годы в литературе активно обсуждаются вопросы нарушения в системе гемостаза у больных с патологией щитовидной железы. Отмечается повышенная смертность от сердечнососудистых и цереброваскулярных заболеваний на фоне тиреотоксикоза [22, 39]. Механизмы, лежащие в основе высокой сосудистой смертности при заболеваниях щитовидной железы, остаются невыясненными кончательно [46]. Возможно, именно гемокоагуляционные нарушения являются причиной данного феномена. О связи свертываемости крови и заболеваний щитовидной железы было известно еще в начале прошлого века. В 1913 г. Kaliebe описал случай церебрального ве-нозного тромбоза у пациента с гипертиреозом,впервые связав эти заболевания [57]. Среди уме- рших по причине тиреотоксикоза тромбоэмболия отмечается в 18% случаев [19]. Острый ишемический инфаркт мозга – хорошо известное проявле- ние тиреотоксической фибрилляц и предсердий, которая является наиболее частым кардиальным осложнением тиреотоксикоза и наблюдается у 10–15% больных в сравнении с 4% в общей популяции [32]. Эти данные имеют большое клиничес- кое значение, поскольку распространенность тро- мбоэмболий у пациентов с мерцанием предсердий, развившимся вследствие тиреотоксикоза, может достигать 15% [33]. Однако мерцательная аритмия и впоследствии кардиоэмболический ин- фаркт мозга – не единственные патологические механизмы острой ишемии мозга при заболева- ниях щитовидной железы. В некоторых работах отмечена более высокая частота тромбоэмболий у больных с мерцательной аритмией на фоне ти- реотоксикоза в сравнении с нетиреотоксическими аритмиями [48]. Описаны случаи тромбоза цереб- ральных вен и синусов при манифестном тиреото- ксикозе [57]. Ассоциация этих двух заболеваний действительно значима, так как тромбоз синусов и вен головного мозга – очень редкое состояние с частотой встречаемости 4 случая на 1 млн в год[59].
Нарушения параметров гемостаза наблюдаются на всех его этапах у больных с патологией щитовидной железы. Условно его можно разделить на первичный, вторичный и фибринолиз [2]. При повреждении эндотелия происходит локальная вазоконстрикция, которая ограничивает кровопотерю и способствует накоплению тромбоцитов и факто- ров свертывающей системы в месте повреждения, затем в результате адгезии и агрегации тромбоцитов формируется тромбоцитарный тромб.
Прочность его недостаточна, и он нуждается в укреплении фибрином, что происходит при актива- ции свертывающей системы на стадии вторичного гемостаза. Завершается процесс восстановлением кровотока за счет механизмов фибринолиза.
В зависимости от механизма активации фактора X условно различают два пути коагуляции — внутренний и внешний.
Более медленный внутренний путь зависит от циркулирующих факторов коагуляции IX и VIII. Внешний путь активации фактора X запускается под действием фактора VII и тканевого фактора, играющего значимую роль в тромбогенезе. Он инициирует коагуляцию, приводя к образованию ее медиаторов: факторов VII, X, II и продукции фибрина, а также напрямую способствует формированию тромба в результате отложения фибрина и IIa-индуцированной активации/агрегации тромбоцитов [13].
В норме эндотелий эффективно предупреждает процессы адгезии, агрегации тромбоцитов, а так- же реакции коагуляции. Способность эндотелия сохранять кровь в жидком состоянии обеспечива- ется отрицательным зарядом эндотелиальных клеток, а также синтезом ингибиторов агрегации тромбоцитов простациклина и оксида азота [31]. Кроме того, эндотелиальный белок тромбомоду- лин препятствует уже начавшейся коагуляции. Основной его функцией является инактивация тромбина и превращение его в мощный активатор антикоагулянтной системы – протеин С, который в присутствии своего кофактора – протеина S – разрушает факторы V и VIII. За счет этого происхо- дит значимое снижение скорости коагуляционных реакций. Эндотелий является основным источни- ком синтеза ингибитора тканевого пути свертывания (TFPI). TFPI связывается с фактором Ха и ин- гибирует начальный этап гемокоагуляции – образование протромбиназы. Наряду с тромбомодулином, протеинами С и S, антитромбином и гепа- рином TFPI относится к естественным антикоагулянтам. Эндотелиальные клетки участвуют в фи- бринолизе за счет синтеза и выделения в кровоток тканевого плазминогенового активатора (t-PA), который активирует плазминовую систему. Поми- мо t-PA в эндотелии образуется и секретируется его ингибитор – PAI-1 (plasminogen activator inhibitor-1). Возрастание ингибирующих факторов, особенно уровня PAI-1, ассоциировано с увеличе- нием риска тромботических осложнений [3].
За поддержание гемостатического баланса ответственны многие факторы, в том числе гормоны, прямо влияющие на первичный и вторичный гемостаз [56]. Влияние тиреоидных гормонов на си- стему коагуляции – фибринолиза в значительной степени обусловлено взаимодействием гормонов и их рецепторов. Известно об участии трийодти- ронина (T3) в метаболизме, пролиферации и ди- фференцировке клеток. Эти эффекты опосредо- ваны ядерными рецепторами тиреоидных гормо- нов. При исследовании действия T3 на регуляцию генов в культуре клеток гепатомы (HepG2) выяв- лено его стимулирующее влияние на выработку таких плазменных протеинов, как протромбин, ангиотензиноген, фибриноген, при этом в отношении плазминогена наблюдался обратный эффект [52]. Низкий уровень T3 часто ассоциирован с патоло- гией сердечно-сосудистой системы. Данный гор- мон влияет на резистентность сосудов, улучшая эндотелиальную функцию [44]. В исследовании S. Baumgartner-Рarzer et al. показано, что T3 увели- чивает продукцию фактора Виллебранда (vWF), фибронектина, эндотелина-1 в культуре эндоте- лиальных клеток [6]. Введение T4 эксперимента- льным животным сопровождалось дозозависимым ростом стимулированной АДФ агрегационной ак- тивности тромбоцитов [4]. Дополнительная инфо- рмация о влиянии тиреоидных гормонов на коагу- ляцию получена благодаря исследованиям, про- веденным на здоровых людях. Так, при назначе- нии добровольцам тиреоидных гормонов в тече- ние 14 дней отмечалось явное возрастание плаз- менного уровня фактора VIII [50], что наблюдалось и при тиреотоксикозе [26, 51]. В ряде случаев тромбоза церебральных вен и синусов у больных тиреотоксикозом также отмечено повышение уровня фактора VIII [61, 43]. При назначении терапии L-тироксином у больных с гипотиреозом отмечае- тся укорочение времени кровотечения, снижение протромбинового времени и активированного частичного тромбопластинового времени (АЧТВ), во- зрастание сниженной активности факторов VIII и vWF [24].
В работе M. Homoncik et al. выявлено повышение базального уровня vWF и ассоциированное с ним ускорение формирования тромбоцитарного тром- ба у больных гипертиреозом. Через 8 недель ти- реостатической терапии тиамазолом до нормальных значений снизился уровень vWF и замедлилась скорость формирования тромба [26]. Е. Coban et al. обнаружили повышение активности vWF при субклиническом тиреотоксикозе [15]. Согласно литературным данным, vWF можно расценивать как плазменный маркер эндотелиальной дисфункции. Выявлено, что vWF ассоциирован с риском инфаркта мозга и сосудистых событий у больных с фибрилляцией предсердий [35].
Достаточно много работ посвящено изучению уровня фибриногена при тиреоидной патологии. Повышенный уровень фибриногена снижался до нормальных значений после лечения тиамазолом в исследовании J. Burggraaf et al. [9]. F. Marongiu et al. обнаружили у больных диффузным токсическим зобом повышение уровня фибриногена и фибринопептидов А и Bβ 15–42, представляющих собой продукты его метаболизма. При восстанов- лении эутиреоза значения фибриногена не отли- чались от группы контроля [38]. Известно, что T3 участвует на уровне транскрипции в регуляции синтеза фибриногена, однако на него влияют и другие факторы: в регуляцию гена фибриногена вовлечены ядерные рецепторы РРАR, IL-6 стиму- лирует экспрессию β-субъединицы фибриногена в культуре гепатоцитов человека [52]. В популяци- онном исследовании M. Dörr et al., в которое было включено 4310 человек, проживающих в регионе йодного дефицита, при проведении регрессионно- го анализа выявлено, что низкий уровень ТТГ яв- ляется независимым фактором риска повышения уровня фибриногена [18].
Образованию фибрина предшествует активация фактора Х и протромбина. Фактор X является ключевым в процессе свертывания крови. В исследовании C. Erem у больных с гипертиреозом выявлено снижение активности фактора X и tPA, повышение активности фактора IX, уровня фиб- риногена, vWF, антитромбина III и PAI-1 [20]. Позднее этим же автором описано значимое повышение активности фактора Х при субклиническом тиреотоксикозе, отражающее состояние потенциальной гиперкоагуляции [19].
Состояние тиреотоксикоза, как правило, характе- ризуется снижением активности фибринолиза, что проявляется снижением уровня плазминогена, t-PA, возрастанием значений PAI-1 [9, 19, 20, 49]. В работе R. Chadarevian et al. свободный T4 отрица- тельно коррелирует с D-димерами, представляющими собой продукты деградации фибрина, уро- вень которых отражает активность плазмина, общую активность формирования и лизиса тромба [11]. Установлена ассоциация D-димеров с риском сердечно-сосудистых заболеваний, инфаркта моз- га, выявлено повышение их уровня при субклиническом тиреотоксикозе [14].
Интересно исследование М. Horn et al. о влиянии на гемостаз супрессорной терапии тиреоидными гормонами у больных раком щитовидной железы [27]. У 14 пациентов осуществлялись заборы кро- ви на параметры гемостаза во время проведения супрессорной терапии и в состоянии гипотиреоза при отмене L-тироксина для выполнения сканирования с радиоактивным йодом. Гемостазиологические параметры сравнивались в состоянии гипер- и гипотиреоза, а также с контрольной груп- пой. При гипертиреозе в сравнении с гипотиреои- дным состоянием выявлено повышение уровня фрагментов протромбина 1+2, фибриногена, фак- тора VIII, t-PA , PAI-1, при этом значения PAI-1 существенно превышали повышенный уровень t- PA. Значения же протеина С и плазмин- антиплазминового комплекса были ниже, чем в фазе гипотиреоза. Уровни фибриногена, протро- мбина 1+2, t-PA , PAI-1, PAI-1/t-PA при гипертире- озе превышали и контрольные значения. Таким образом, на биохимическом уровне тиреоидные гормоны вызывают протромботический и антифи- бринолитический эффекты.
Y. Li et al. исследовали высвобождение t-PA сосу- дистыми эндотелиальными клетками у 33 боль- ных с болезнью Грейвса–Базедова после веноз- ной окклюзии в течение 10 минут. Повторно об- следовали больных через 30 дней после лечения радиоактивным иодом. У лиц, не получавших тиреостатики, и тех, кто оставался гипертиреоидным после лечения, базальный уровень t-PA и его вы- свобождение были значительно ниже, чем в контрольной группе и у пациентов, достигших эутиреоза; в то же время отмечалось повышение PAI-1 и vWF [34].
Существуют работы, указывающие на состояние гипокоагуляции при гипертиреоидных состояниях [1, 42, 45, 47]. Известно, что тиреотоксикоз характеризуется повышенным потреблением витамин К-зависимых факторов свертываемости крови II, VII, X за счет ускорения скорости метаболизма [9,30]. Возможно, при длительном повышении уров- ня T3 и T4 развивается гипокоагулемия потребле- ния, т.е. не исключено вторичное происхождение гипокоагулемии. Причиной кровоточивости при гипертиреозе могут стать хрупкость капилляров, тяжелое поражение печени, вызванное тиреотоксикозом, и вторичная сердечная недостаточность.
Суммируя влияние тиреоидной дисфункции на различные гемостатические параметры, можно сделать вывод о состоянии гиперкоагуляции у больных с тиреотоксикозом, в то время как выраженный гипотиреоз характеризуется тенденцией к кровотечению [21, 56–58]. При субклиническом и легком гипотиреозе некоторые исследователи, напротив, отмечают увеличение риска тромбоза[12].
Обсуждается несколько механизмов гиперкоагуляции при тиреотоксикозе, при этом именно эндотелиальные клетки играют ключевую роль. Эндо- телий представляет собой метаболически актив- ную ткань, синтезирующую и секретирующую раз- личные биологически активные вещества. При ги- пертиреозе увеличен уровень некоторых выделя- емых эндотелием протеинов, включая vWF, фиб- ронектин, PAI-1, TFPI, причем после проведенного лечения наблюдается нормализация их значений [6, 40, 42, 47]. У больных тиреотоксикозом имеет место также повышение уровня растворимых ад- гезивных молекул ICAM-1, VCAM-1, E -, L — и P- селектинов, других эндотелиальных молекул, та- ких как эндотелин-1, тромбомодулин [40, 41, 55,62]. Согласно общепринятой точке зрения, в фи- зиологических условиях образование и выделе- ние атромбогенных веществ преобладает над тромбогенными, и это является обязательным условием тромборезистентности сосудов. Изме- нение тиреоидной функции приводит к эндотелиальной дисфункции и нарушению тонкого баланса в системе коагуляции и фибринолиза.
В процессе активации эндотелия большое значе- ние имеют гипердинамический тип кровообраще- ния, адренергическая нервная система, цитокины. Характерный для тиреотоксикоза тип кровообра- щения с увеличением сердечного выброса приво- дит к возрастанию напряжения сдвига в кровенос- ных сосудах. В эндотелии присутствуют «механо- сенсоры», реагирующие на воздействие гемоди- намических факторов. Напряжение сдвига моду- лирует экспрессию эндотелиальных генов и таким образом влияет на синтез тромборегуляторов [3].
Активация автономной нервной системы и адренергические стимулы в условиях тиреотоксикоза приводят к повышению сывороточной концентрации vWF, t-PA и фактора VIII [8, 9]. В некоторых исследованиях β-адреноблокаторы предупреждают увеличение vWF и фактора VIII в ответ на стимуляцию адреналином [36]. Однако в других работах при назначении β-адреноблокаторов в отличие от тиреостатиков не отмечено снижения повышенных значений эндотелиальных протеинов[9].
Возможно, цитокины являются медиаторами акти- вации эндотелиальных клеток. В литературе сообщалось о возрастании vWF в ответ на воздействие IL-6, длительная стимуляция IL-1 приводит к увеличению высвобождения vWF из эндотелиа- льных клеток [10, 54]. Некоторые цитокины (IL-1, TNF -α) подавляют фибринолитическую актив- ность крови, главным образом за счет увеличения синтеза и секреции PAI-1 [3]. TNF -α один либо в комбинации с INF -γ участвует в регуляции транс- крипции гликопротеина Ibα (GP Ibα), обеспечива- ющего взаимодействие vWF с эндотелием [7]. У больных тиреотоксикозом уровни TNF -α, IL-5, IL-6, IL-8 и IL-12 повышены [17, 25, 53, 60]. Измене- ние сывороточного уровня цитокинов может при- водить к нарушению высвобождения выделяемых эндотелием веществ, что лежит в основе гиперко- агуляции.
Предполагаемым медиатором, вызывающим по- вышение vWF при гипертиреозе, считают аргинин- вазопрессин (AVP). Гипертиреоидные больные имеют высокий уровень AVP в сравнении с паци- ентами контрольной группы. После коррекции ти- реоидного статуса значения AVP возвращаются к норме. Инфузия AVP или его аналога десмопрессина приводит к увеличению плазменной концентрации vWF у здоровых лиц [5]. Исходя из этого высказано предположение, что повышение уровня тиреоидных гормонов вызывает возрастание кон- центрации эндогенного AVP и соответственно гиперкоагуляции.
Существует также альтернативная теория, пред- полагающая снижение активности фибринолиза как причину гиперкоагуляции при тиреотоксикозе. Она основывается на том, что у гипертиреоидных пациентов снижен уровень t-PA и увеличена кон- центрация его ингибитора PAI-1 [20, 27, 34]. Не исключено, что этот механизм лежит в основе ги- перкоагуляции при тиреотоксикозе. Однако, не- смотря на проведенные исследования и выска- занные предположения, причины, лежащие в ос- нове гиперкоагуляции при данной патологии, ос- таются до конца не выясненными, и иммуноцито- киновые механизмы рассматриваются в патогене- зе гемостатических нарушений наряду с прямым действием гормонов щитовидной железы на гемо- стаз [21, 38]. В пользу последнего предположения говорят разнонаправленность гемокоагуляцион- ных нарушений при гипо- и гипертиреозе, а также нормализация большинства показателей гемоста- за при восстановлении эутиреоза. Однако идио- патическая тромбоцитопеническая пурпура, гиган- токлеточный артериит, вторичный антифосфоли- пидный синдром, приобретенная тромбофилия в отдельных случаях ассоциируются с аутоиммун- ными заболеваниями щитовидной железы [37]. Вероятно, как непосредственное нарушение гор- монального статуса, так и аутоиммунные механи- змы модифицируют патофизиологические про- цессы первичного и вторичного гемостаза, что приводит к кровотечению и тромбозу.
Тем не менее, взаимосвязью между тиреоидными гормонами и системой коагуляции клиницисты ча- сто пренебрегают. Остается открытым вопрос о необходимости коррекции гемо-стазиологических нарушений при тиреотоксикозе, что особенно ак- туально при высоком риске тромбоза. Известно, что фибрилляция предсердий непосредственно ассоциирована с состоянием гиперкоагуляции, при ее возникновении на фоне тиреотоксикоза риск тромбоэмболий еще выше [16]. Подобная опасность существует в случае сочетания иммун- ного тиреотоксикоза с аутоиммунной офтальмо- патией при необходимости использования высо- ких доз глюкокортикостероидов, которые также индуцируют состояние гиперкоагуляции. Описаны клинические случаи тромбоза вен, синусов головного мозга, тромбоэмболий легочной артерии, со- судов почек у больных, находившихся на кортикостероидной терапии [56]. На сегодняшний день решение о назначении антитромботической терапии больным с тиреотоксикозом и мерцательной аритмией основывается на существующих факторах риска инфаркта мозга [23, 29].
Таким образом, различные нарушения коагуляции и фибринолиза наблюдаются у пациентов с гипе- рфункцией щитовидной железы и могут проявляться как субклиническими лабораторными из- менениями, так и клинически значимыми расстройствами коагуляции. Необходимы новые качес- твенные исследования этой проблемы с изучени- ем экономической эффективности корригирующей терапии.
Литература
1. Ковалев А.П. // Врачебное дело. – 1990. – Т.3. – С. 75–78.
2. Насонов Е.Л. // Антифосфолипидный синд- ром. – М., 2004. – С. 58–72.
3. Петрищев Н.Н., Папаян Л.П. Физиологичес- кие механизмы, принципы диагностики основных форм геморрагических заболеваний:учебное пособие. – СПб., 1999.
4. Сулкарнаева Г.А. Внутрисосудистое сверты- вание крови, толерантность к тромбину, активность тромбоцитов и интенсивность липидпероксидации при гипер- и гипотиреозе:автореф. дис. … д-ра мед. наук. – Тюмень,2007.
5. Arnaout M.A., Awidi A.S., el-Najdawi A.M. et al.// Acta Endocrinol. (Copenh.). – 1992. – Vol.126. – P. 399–403.
6. Baumgartner-Parzer S.M., Wagner L., ReiningC. et al. // J. Endocrinol. – 1997. – Vol. 154. –P. 231–239.
7. Beacham D.A., Tran L.P., Shapiro S.S. // Blood.– 1997. –Vol. 89. – P. 4071–4077.
8. Bloom A.L. // Mayo Clin. Proc. – 1991. –Vol. 66.– P. 743–751.
9. Burggraaf J., Lalezari S., Emeis J.J. et al. // Thyroid. – 2001. – Vol. 11, N 2. – P. 153–160.
10. Burstein S.A. // Stem Cells. – 1994. – Vol. 12. –P. 386–393.
11. Chadarevian R., Bruckert E., Ankri A. et al. // Thromb. Haemost. – 1998. – Vol. 79. – P. 99–103.
12. Сhadarevian R., Bruckert E., Leenhardt L. et al.// J. Clin. Endocrin. Metab. – 2001. – Vol. 86, N2. – P. 2732–2737.
13. Chu A.J. // Front. Biosci. – 2006. – Vol. 11. – P.256–271.
14. Coban E., Aydemir M. // Medical Science Monitor. – 2008. – Vol. 14, N 1. – P. 42–46.
15. Coban E., Aydemir M., Yazicioglu G. et al. // J.Endocrin. Invest. – 2006. – Vol. 29. – P. 197–200.
16. Conway D.S.G., Buggins P., Hughes E. et al. // J. Amer. Coll. Cardiol. – 2004. – Vol. 43. – P.2075–2082.
17. Diez J.J., Hernanz A., Medina S. et al. // Clin.Endocrin. (Oxf.). – 2002. – Vol. 57. – P. 515–521.
18. Dörr M., Robinson D.M., Wallaschofski H. et al.// J. Clin. Endocrin. Metab. – 2006. – Vol. 91, N2. – P. 530–534.
19. Erem C. // Clinical Endocrinology. – 2006. –Vol. 64. – P. 323–329.
20. Erem C., Ersoz H.O., Karti S.S. et al. // J.Endocrin. Invest. – 2002. – Vol. 25, N 4. – P.345–350.
21. Franchini M. // Hematology. – 2006. – Vol. 11, N 3. – P. 203–208.
22. Franklyn J. A., Sheppard M.C., Maisonneuve P.// JAMA. – 2005. – Vol. 294, N 1. – P. 71–80.
23. Fuster V., Rydén L.E., Cannom D. et al. // Circulation. – 2006. – Vol. 114. – P. 257–354.
24. Gullu S., Sav H., Kamel N. // Eur. J.Endocrinology. – 2005. – Vol. 152. – P. 355–361.
25. Hidaka Y., Okumura M., Shimaoka Y. et al. // Thyroid. – 1998. – Vol. 8. – P. 235–239.
26. Homoncik M., Gessl A., Ferlitsch A. et al. // J.Clin. Endocrin. Metab. – 2007. – Vol. 92, N 8. –P. 3006–3012.
27. Horne M.K., Singh K.K., Rosenfeld K.G. et al. // J. Clin. Endocrin. – 2004. — Vol. 91, N 9. – P.4469–4473.
28. Kaeng W.L., Gregory Y.H.L. // Arch. Intern.Med. – 2003. – Vol. 163. – P. 2368–2392.
29. Karla L., Lip G.Y.H. and on behalf of the Guideline Development Group for the NICE clinical guideline for the management of atrial fibrillation // Heart. – 2007. – Vol. 93. – P. 39–44.
30. Kellett H.A., Sawers J.S.A., Boulton F. E. et al.// Q. J. Med. – 1986. – Vol. 225. – P. 43–51.
31. Kickler T. S. // Transfusion Alternatives in Transfusion Medicine. – 2006. – Vol. 2. – P. 79–85.
32. Klein I., Ojamaa K. // New Engl. J. Med. – 2001.– Vol. 344. – P. 501–509.
33. Ladenson P.W. // J. Clin. Endocrin. Metab. –1993. – Vol. 77. – P. 332–333.
34. Li Y., Chen H., Tan J. et al. // Eur. J. of Clinical Investigation. – 1998. – Vol. 28. – P. 1050–1054.
35. Lip G.Y.H., Lane D., Walraven C.V. et al. // Stroke. – 2006. – Vol. 37. – P. 2294–2300.
36. Liu L., Wang X., Lin Z. et al. // Endocrin. Res. –1993. – Vol. 19. – P. 123–133.
37. Marongiu F., Cauli C., Mariotti S. // J. Endocrin.Invest. – 2004. – Vol. 27, N 11. – P. 1065–1071.
38. Marongiu F., Conti M., Murtas M.L. et al. // Horm. Metab. Res. – 1991. – Vol. 23, N 12. – P.609–611
39. Metso S., Jaatinen P., Huhtala H. et al. // J.Clin. Endocrin. Metab. – 2007. – Vol. 92, N 6. –P. 2190–2196.
40. Modzelevska A., Szelachowska M., ZonenbergA. et al. // Endocrin. Pol. – 2006. – Vol. 57, N 3.– P. 202–210.
41. Morikawa Y., Morikawa A., Makino I. // J. Clin.Endocrin. Metab. – 1993. – Vol. 16, N 3. – P.609–614.
42. Morishita E., Hashimoto T., Asakura H. et al. // Thromb. Hemost. – 1998. – Vol. 79, N 5. – P.919–923.
43. Mouton S., Nighoghossian N., Berruyer M. et al.// Eur. Neurol. – 2005. – Vol. 54. – P. 78-80.
44. Napoli R., Guardasole V., Angelini V. et al. // J.Clin. Endocrin. Metab. – 2007. – Vol. 92, N 1. –P. 250–254.
45. Negrev N.N., Radev R.Z., Velikova M.S. // Intern. J. Immunopathol. Pharmacol. – 2008. –Vol. 21, N 1. – P. 221–226.
46. Nyirenda M.J., Clark D.N., Finlayson A.R. et al.// Thyroid. – 2005. – Vol. 15, N 7. – P. 718–725.
47. Özcan M.A. ,Çömlekçi A., Demirkan F. et al. // Thromb. Res. – 2003. – Vol. 110, N 4. – P.243–247.
48. Presti C., Hart R.G. // Amer. Heart J. – 1989. –Vol. 117. – P. 976–977.
49. Rennie J.A., Bewsher P.D., Murchison L.E., Ogston D. // Acta Hematol. – 1978. – Vol. 59, N3. – P. 171–177.
50. Rogers J.S., Shane S.R. // J. Lab. Clin. Med. –1983. – Vol. 102, N 3. – P. 444–449.
51. Rogers J.S., Shane S.R., Jencks F.S. // Ann.Intern. Med. – 1982. – Vol. 97. – P. 713–716.
52. Shih C.H., Chen S.L., Yen C.C. et al. // Endocrinology. – 2004. – Vol. 145. – P. 2804–2814.
53. Siddiqi A., Monson J.P., Wood D.F. et al. // J.Clin. Endocrin. Metab. – 1999. – Vol. 84. – P.435–439.
54. Sixma J.J., de Groot P.G. // Mayo Clin. Proc. –1991. – Vol. 66. – P. 628–633.
55. Soma M., Maeda Y., Matsuura R. et al. // Rinsho. Byori. –1997. – Vol. 45, N 1. – P. 77–81.
56. Squizzato A., Gerdes V.E.A, Ageno W. et al. // Intern. Emerg. Med. – 2007. – Vol. 2. – P. 76–83.
57. Squizzato A., Gerdes V.E.A, Brandjes D.P.M. et al. // Stroke. – 2005. – Vol. 36. – P. 2302–2310.
58. Squizzato A., Romualdi E., Büller H.R., GerdesV.E.A. // J. Clin. Endocrin. Metab. – 2007. –Vol. 92, N 7. – P. 2415–2420.
59. Stam J. // Adv. Neurol. – 2003. – Vol. 92. – P.225–232.
60. Tamaru M., Matsuura B., Onji M. // Eur. J.Endocrin. – 1999. – Vol. 141. – P. 111–116.
61. Verbene H.J., Fliers E., Prummel M.F. et al. // Thyroid. – 2000. – Vol. 10, N 7. – P. 607–610.
62. Wenisch C., Myskiw D., Gessl A. // J. Clin.Endocrin. Metab. – 1995. – Vol. 80, N 7. – P.2122–2126.
Медицинские новости. – 208 . – №11.
Источинк: www.mednovosti.by
Комментировать