Терапия

Эффективность антисептика Декасан в комплексном лечении больных с обострением хронического цистита

Данные применения антисептика Декасан в комплексном лечении больных с обострением хронического цистита.

С.В. Берестенко

Специализированная медико-санитарная часть №9, г. Желтые Воды

В работе представлены данные применения антисептика Декасан в комплексном лечении больных с обострением хронического цистита.

Ключевые слова: декаметоксин, Декасан, хронический цистит.

Хронический цистит – хронический воспалительный процесс в стенке мочевого пузыря, наиболее частое осложнение острых заболеваний мочевого пузыря, мочеиспускательного канала, почек и половых органов как у мужчин, так и у женщин. Нередко его диагностируют как сопутствующую патологию у больных сахарным диабетом, при различной гинекологической патологии, при хронических заболеваниях           пищеварительного           тракта, спинного мозга, нейропатиях [5, 14, 22]. Осложнением лучевой терапии довольно часто становятся лучевые циститы. Общепринято их подразделять на     неосложненные     (катаральный,     эрозивнодесквамативный и атрофический цистит) и осложненные  формы  (язвенно-некротический,  профузное  кровотечение  вплоть  до  тампонады,  инкрустированный  цистит,  вторично-сморщенный  мочевой пузырь и его свищи) [3, 28, 29].

 Наиболее полная классификация циститов представлена А.В. Люлько [14], который в зависимости от характера и глубины морфологических изменений  подразделяет  хронический  цистит  на  катаральный,  язвенный,  полипозный,  кистозный,  эмфизематозный, эозинофильный, инкрустирующий и некротический. Хроническим цистит считают при возникновении двух обострений в течение 6 мес или трех в течение года. Особенно часто урологам  приходится  встречаться  с  послеоперационными, лучевыми, катетер-ассоциированными хроническими  циститами,  связанными  с  наличием устойчивой  госпитальной  и  условно-патогенной микрофлоры.

К основным симптомам цистита относят дизурические  явления  (частые  болезненные  позывы  к мочеиспусканию)  и  микро или  макрогематурии, обусловленные          выраженным воспалительным процессом стенки мочевого пузыря.

У  больных  хроническим  циститом  часто  наблюдаются нарушения уродинамики, а также снижение неспецифической и специфической иммунной защиты, что приводит к образованию бактериальных пленок в складках слизистой оболочки мочевого пузыря [4, 24]. Достоверно известно, что бактерии в организме существуют в двух формах: в виде  микробного  планктона  (МП)  и  микробных биопленок (МБП). МП свободно плавает в биологических жидкостях организма и не связан со слизистой оболочкой, он способен обсеменять слизистую оболочку мочевого пузыря и вызывать обширный воспалительный процесс с классической картиной  острого  цистита.  Планктоновые  бактерии уязвимы для антибактериальных препаратов, поэтому  острый  цистит  достаточно  эффективно лечат короткими курсами антибиотиков. При хроническом цистите бактерии организуются в самостоятельное структурированное сообщество, сбалансированное  относительно  видового  состава бактерий, в котором существует функциональное разделение его членов, которые способны передавать   генетическую   информацию.   Микробные тела, образующие МБП, формируют полимерную оболочку – матрикс, – состоящий из экзополисахаридов (90%), нуклеиновых кислот и протеинов, иногда грибов, и плотно прилегающий к поверхности субстрата. Бактерии, организованные в МБП, лучше адаптируются к воздействию антибиотиков, чем бактерии в форме планктона. Они способны выдерживать  концентрации антибиотиков, более чем в 100 раз превышающие бактерицидную концентрацию  для  планктоновой  формы  бактерий. Причинами суперустойчивости микроорганизмов в МБП к антибиотикам являются следующие факторы:  способность  синтезировать  ферменты,  разрушающие антибиотик; проникновение антибиотиков внутрь МБП замедляется из-за мукополисахаридного          «плаща»        биопленки;    дезактивация (нейтрализация) позитивно заряженного антибиотика негативно заряженным полимером матрикса; переход   бактерий   в   состояние   своеобразного анабиоза и задержки репликации («задержанная мультипликация» – suspended animation); сужение водных канальцев и, как следствие, замедление или приостановка пенетрации антибиотика в глубокие слои МБП. Все это приводит к тому, что антибиотик уничтожает в МБП только поверхностно расположенные микробные тела и МП. Поэтому в определенных  условиях  происходит  «возрождение» МБП с резерва глубоко расположенных слоев бактерий и возникает рецидив обострения воспалительного процесса при хроническом цистите[24].

 Учитывая значительную распространенность хронических циститов, наличие различных факторов, отягощающих течение воспалительного процесса в  стенке  мочевого  пузыря,  снижение  иммунной реактивности  организма  на  фоне  персистирования устойчивой микрофлоры, а также наличие сопутствующей  патологии,  необходимо  соблюдать определенные   принципы   лечения   хронических циститов [8, 9, 12, 13, 17, 21, 27]:

1.  Антибактериальная  терапия  с  учетом  чувствительности            мочи   к          антибактериальным препаратам.

2.  Иммунотерапия.

3.  Местное лечение (инстилляции в мочевой пузырь  антибиотиков,  анальгетиков,  глюкокортикоидов,  антисептиков,  масел,  обволакивающих препаратов, стимуляторов регенерации и микроциркуляции в стенке мочевого пузыря и др.).

4.  Физиотерапия в различных вариациях (электрофорез, лазеротерапия, электростимуляция и др.).

5.  Лечение сопутствующих заболеваний (сахарного диабета, опущения мочевого пузыря, недержания мочи, гиперплазии предстательной железы, хронического уретрита и простатита и др.).

Лечение    хронического    цистита    представляет большую проблему, поскольку ликвидировать патогенные бактерии, организованные в биопленки, с   помощью   традиционной   антибиотикотерапии практически  нереально.  Это  объясняется  также повреждением  бактериальными  пленками  гликозаминогликанового (ГАГ) слоя, который покрывает поверхность переходного эпителия мочевого пузыря  и  необходимостью  его  восстановления  в процессе лечения [17, 22, 23]. Этот слой играет существенную роль в защите эпителиальных клеток мочевого пузыря от токсических компонентов мочи.   При   повреждении   ГАГ-слоя   происходит прямой контакт компонентов мочи с эпителиальными клетками; в этих условиях усиливаются как бактериальная  адгезия,  так  и  воспалительные процессы  в  стенке  мочевого  пузыря.  ГАГ-слой может  повреждаться  растворимыми  факторами вирулентности, продуцируемыми E.coli. Восстановить  нарушенный  ГАГ-слой  можно  с  помощью различных  методов  создания  покровного  слоя, включая применение гепарина, перорального пентосанполисульфата и гиалуроновой кислоты [14,17, 22, 23, 30–32].

В качестве эффективного средства, направленного  на  ликвидацию  дефектов  ГАГ-слоя  мочевого пузыря   рекомендуется   применять   препарат   – Uropol-S [17].

В одном из исследований приняли участие больные, у которых были неэффективны гидродилатация и введение в мочевой пузырь диметилсульфоксида. Было установлено, что при интерстициальном  цистите  на  поверхности  слизистой  оболочки  отсутствует  ГАГ-слой,  в  норме  защищающих ее от действия мочи. Больные получали пентосан, 50 мг внутрь 4 раза в сутки или по 150 мг внутрь 2 раза в сутки в течение 4–8 нед. Двадцать из 24 больных отметили уменьшение выраженности всех симптомов (императивных позывов, учащенного мочеиспускания и никтурии) на 80%, 2 больных – на 50–80%. У этих больных самочувствие продолжало улучшаться и после завершения лечения. У 2 больных оно оказалось неэффективным [23].

Наряду с антибактериальной терапией используют инстилляции различных препаратов в мочевой пузырь [12–14, 17, 23]. При буллезной, буллезнофибринозной         и   гранулярных   формах   цистита применяют  инстилляции  препаратов  серебра  с новокаином,     колларгол      в                         разведении 1:5000, 1:1000 в соотношении 1:1 с 0,5% раствором новокаина, в общем количестве 40–50 мл, введение раствора  диоксидина,  димексида  с  новокаином. Применяют инстилляцию мочевого пузыря 20 мл 40% раствора димексида 1 раз в сутки или через день, всего на курс 10–15 инстилляций [14]. Внутрипузырные инстилляции данных препаратов используют давно, но они не утратили своей эффективности и до настоящего времени.

При катаральной и геморрагической формах – инстилляции масляных растворов (синтомициновой эмульсии, масел шиповника и облепихи) [14]. При абактериальном цистите рекомендуют вводить в мочевой пузырь 0,1% раствор оксихлорозена [23].

 Хорошие результаты получены от введения гепарина по 20 000 ЕД в 1000 мл 5% раствора глюкозы внутривенно капельно в течение 4 сут. Рекомендовано 2 курса лечения с 4-дневными интервалами. Гепарин применяли местно путем инстилляций (20 000 ЕД гепарина в 2 мл раствора натрия хлорида изотонического в мочевой пузырь) [14].

Отмечено  значительное  улучшение  уже  после первого 4-дневного курса ежедневных внутривенных капельных вливаний 5000–10 000 ЕД гепарина у 70% женщин с интерстициальным циститом. У  остальных  больных  уменьшалась  дизурия  в конце второго курса 4-дневного лечения, проводимого с интервалом 4 дня [22].

Инстилляции гиалуроновой кислоты женщинам с рецидивными циститами (40 мг в 50 мл буферного раствора) еженедельно в течение 4 нед, а затем ежемесячно  в  течение 4 мес  оказались эффективными – в течение 5-месячного периода лечения ни у одной из 40 женщин не было отмечено рецидивов  инфекции  мочевого  пузыря  [25].  За 12,4 мес наблюдения отмечено, что число рецидивов уменьшилось в 13 раз, а их частота – в 14,3 раза. Инстилляции гиалуроновой кислоты в мочевой пузырь могут стать альтернативой применению антибиотиков при хронических циститах [17].

Эффективным  средством  для  лечения  хронических      циститов        является            диметилсульфоксид (ДМСО,  димексид),  обладающий  способностью проникать через биологические мембраны и оказывающий противовоспалительное,  анальгетическое, антисептическое и фибринолитическое действие. В мочевой пузырь вводят 30–50 мл 50% раствора ДМСО, разбавленного 0,5% раствором новокаина на 15–30 мин. Инстилляцию проводят 1–2 раза в неделю на протяжении 4–8 нед. Для усиления эффекта может быть добавлен диоксидин  [17].  Для  снижения  риска  рецидивов  одна группа пациентов получала внутрипузырно гепарин в дозе 10 000 ЕД каждый месяц после курса лечения ДМСО, вторая группа – только ДМСО. В группе  с  применением  гепарина  внутрипузырно удалось добиться снижения рецидивов на 20% по сравнению с 52% в группе с монотерапией ДМСО [12, 13]. Хорошие результаты получены при применении    внутрипузырного   введения    гепарина вместе с гидрокортизоном в сочетании с оксибутинином и толтеродином [12, 13, 23].

Бывает, что симптомы хронического цистита облегчает введение в мочевой пузырь 50% раствор ДМСО, 50 мл 1 раз в 2 нед. Раствор оставляют в мочевом пузыре на 15 мин. По данным авторов, более  эффективно  применение  0,4%  раствора оксихлорозена.  Мочевой  пузырь  заполняют  раствором под давлением 10 см вод.ст. Лечение проводят под общей анестезией. Перед ним обязательна                     цистография,     так     как      при      пузырномочеточниковом рефлюксе может развиться фиброз мочеточника [23].

Хлорпактин  –  препарат,  использовавшийся  для лечения  туберкулеза,  назначают  внутрипузырно тем  пациентам,  которые  безуспешно  лечились димексидом.  Хлорпактин  в  виде  0,4%  раствора вводили под давлением 10 см вод.ст. с перерывом 1 мес. Частота эффективности составляет от 50% до 72%.

Применение вакцины БЦЖ в виде 6-недельного курса  оказалось  эффективным  в  60%,  хотя  результаты исследования были статистически недостоверными [12, 13].

К препаратам, используемым для восстановления ГАГ-слоя уротелия, относятся:

1.  Гепарин, применяемый в виде инстилляций по 10 000 ЕД в 10 мл стерильной воды, три раза в неделю в течение 3 мес. Эффективность – более 50% [17, 23].

2.  Пентозанполисульфат (PPS) – гликопротеид, применяемый внутрипузырно по 300 мг в 50 мл  физиологического  раствора  два  раза  в неделю в течение 3 мес [17, 30–32].

3.  Гиалуроновая кислота (цистистат). Сообщено об улучшении у 56% через 4 нед лечения и 71% через 7 нед [17, 25].

4.  Хондроитин  сульфат  (Urospol-S)  –  данный препарат  также  восстанавливает  ГАГ-слой. Вводится внутрипузырно 40 мл 0,2% раствора. Первые 4 нед – 1 раз в неделю, затем 1 раз в месяц в течение 12 мес [17].

При лучевых циститах методом выбора является местное  применение  в  виде  инстилляций  в  полость  мочевого  пузыря  5–10%  раствора  ДМСО. Благоприятное действие димексида подтверждено при лечении более 800 больных с лучевыми повреждениями мочевого пузыря [3].

 Лечение  обычно  начинали  примерно  через  3–4 нед после биопсии стенки мочевого пузыря с введения цитодеструктивных препаратов (колларгола или ДМСО в концентрации не выше 10%) [21]. В терапии  интерстициального  цистита  авторы  не придерживались достаточно агрессивной цитодеструктивной          методики               (использование            30–50% раствора ДМСО или 1–2% раствора нитрата серебра), которую рекомендуют другие авторы [12–14, 17, 23], так как опыт показал, что испытываемый при этом пациенткой дискомфорт превышает положительный ближайший и отдаленный эффект от лечения. После 10 процедур цитодеструктивной терапии переходили к введению препаратов, усиливающих синтез мукополисахаридов клетками  уротелия  (гепарин  по  40  000  ЕД,  а  также средств,  способствующих  ускорению  репаративных процессов эпителия мочевого пузыря (гепон и актовегин последовательно)) [21].

Особое внимание на данном этапе лечения авторы [3, 21] уделяют применению гепона, который вводили ежедневно в течение 5–10 сут по 0,002 г, предварительно растворив его в 10 мл физиологического раствора.

Гепон – препарат, созданный совместно английскими учеными и сотрудниками ГНЦ Институт иммунологии ФМБА (рег. номер 000015/04–2001). Он представляет собой синтетический пептид, состоящий из 14 аминокислотных остатков с молекулярной массой 1818 дальтон, который оказывает комплексное иммуномодулирующее и противовирусное действие. Для лечения лучевых циститов местно применяли Гепон в виде инстилляции мочевого   пузыря   0,04%   раствором   (содержимое флакона Гепона 0,002 г растворяли перед применением в 5 мл стерильного физиологического раствора). Первые 10–12 дней орошение проводили дважды в день, в дальнейшем переходили на однократные инстилляции [3].

У отдельных больных после лучевой терапии по поводу рака шейки матки или рака мочевого пузыря  возникает  геморрагический  цистит,  нередко сопровождающийся  обильными  кровотечениями. Это осложнение наблюдается и при лечении циклофосфамидом. При этом эффективно введение в мочевой пузырь 3,9% раствора формальдегида (его  готовят  путем  десятикратного  разведения стандартного  39%  раствора).  После  заполнения мочевого пузыря катетер пережимают на 30 мин, а затем промывают мочевой пузырь 10% раствором этанола. При необходимости процедуру проводят еще 1–2 раза через день [23, 26].

При неэффективности формальдегида или серебра  нитрата  остановки  кровотечения  можно  добиться  с  помощью  непрерывной  внутривенной инфузии  вазопрессина.  С  той  же  целью  можно провести  селективную  эмболизацию  внутренних подвздошных артерий [5, 23].

В  литературе  приведены  также  результаты  по внутрипузырному  введению  резиниферотоксина (RTX), ботулинического токсина (ВТА), оксибутинина в дозе 10 мг, масла чайного дерева, пункционное введение в околопузырную клетчатку озоно-кислородной  смеси  с  одновременной  внутрипузырной инстилляцией масел «Озонид», однако требуется проведение дальнейших исследований для решения вопроса об их эффективности [12, 13, 21]. Таким образом, несмотря на многообразие препаратов, применяемых для лечения хронического  цистита,  ни один  из них не  является полностью эффективным.

Бесконтрольное применение антибиотиков привело   к          возникновению         хронических       циститов                   с устойчивой  микрофлорой  в  слизистой  оболочке мочевого пузыря, трудно поддающейся лечению с использованием  известных  методик  и  антимикробных препаратов. Поэтому хронический цистит рассматривается   как   заболевание,   требующее глубокого       клинического,           специализированного урологического, микробиологического, иммунологического обследования и комплексного лечения с использованием  современных  методик  и  лекарственных препаратов. В литературе встречается множество новых антисептических препаратов, в частности отечественный антисептик Декасан, который  начали  применять  для  лечения  гнойных ран в хирургии и других областях медицины, но данных по  эффективности  его  при  хроническом цистите мы не встретили [1, 2, 6, 7, 10, 11, 15, 16,18–20].

Целью исследования явилось изучение эффективности   внутрипузырного      применения                   отечественного                антисептика  Декасан      у          больных        с обострением  хронического  неосложненного  бактериального цистита.

МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ

Обследованы 32 пациента с обострением хронического цистита (мужчины и женщины) в возрасте 57–86  лет,  которым  проводили  внутрипузырное введение  раствора  антисептика  Декасан  (0,02% раствора  декаметоксина)  –  1-я  группа.  Средний возраст участников 1-й группы составил 59,6 года, мужчин – 10, женщин – 22. Раствор Декасана вводили в мочевой пузырь в разных концентрациях в зависимости от вида цистита.

2-я группа (25 больных) – пациенты с хроническим циститом,  которым  в  мочевой  пузырь  вводили раствор  фурацилина.  Средний  возраст  в  этой группе составил 58,4 года, мужчин – 20, женщин –5. Стандартный аптечный раствор фурацилина в виде водного 0,02% раствора (1:5000) вводили в мочевой пузырь или применяли для промывания полости мочевого пузыря через эпицистостомический дренаж.

Контрольную  группу  (3-ю  группу)  составили  30 больных хроническим циститом, которым внутрипузырные  инстилляции  не  проводили.  Средний возраст – 56,4 года, мужчин – 11, женщин – 19.

В 1-й, 2-й и 3-й группах проводили антибактериальную терапию соответственно микробиологическим посевам мочи с определением чувствительности выделенных культур к антибиотикам, в обязательном порядке назначали нитрофураны (фурагин или фуромаг).

Больные  с  хроническим  циститом  обследованы клинически,  всем  пациентам  проведены  микробиологические  исследования  мочи  до  и  после курса лечения. Определяли микробное число, вид и количество выделенных штаммов, их чувствительность к антибиотикам.

Результаты проведенного лечения оценивали по клиническим параметрам, выраженности болевого и дизурического синдрома, лабораторным показателям анализов  мочи, степени  микробной обсемененности мочи, по количеству стерильных посевов мочи после лечения, по длительности проводимого лечения. Хронический цистит наблюдали  при  разной  патологии  –  послеоперационный цистит, постлучевой при опухолях мочевого пузыря,  цистит  у  мужчин  при  гиперплазии  предстательной железы, осложненной острой или хронической задержкой мочи с дренированием мочевого пузыря уретральным катетером или эпицистостомой,  а  также  хронический  цистит  у  женщин, сопровождающийся недержанием мочи.

Комбинированное лечение хронического цистита с использованием антисептического раствора Декасан применили для лечения 32 пациентов. До начала лечения у пациентов был выражен болевой синдром в нижних отделах живота, в промежности,  а  также  рези  при  мочеиспускании  или  в конце  мочеиспускания,  у  женщин  наблюдалось недержание мочи. Женщинам при ургентном недержании мочи назначали Уротол – толтеродина гидротартрат (Urotol – фирма Zentiva) по 1 мг два раза  в  день  внутрь  в  течение  месяца.  Уротол назначали  пациентам  во  всех  трех  группах  при наличии  частоты  мочеиспусканий  свыше  7–8  в сутки и более 2–3 мочеиспусканий ночью, при выраженном синдроме нижних мочевых путей.

Таким образом, наша методика лечения хронического цистита заключается в комплексном применении:

1.  Внутрипузырных    инстилляций    антисептика Декасан в различных концентрациях и с различной экспозицией в зависимости от выраженности воспалительного процесса в мочевом пузыре при бактериальном хроническом цистите.

2.  Антибактериальной терапии в соответствии с микробиологическим посевом мочи и чувствительностью  выделенной  микрофлоры  к  химиотерапевтическим препаратам.

3.  Симптоматического лечения с использованием  десенсибилизирующих,  антигистаминных, обезболивающих            препаратов,             М-холиноблокаторов и препаратов, снижающих тонус  мочевых  путей  (Уротол  (Tolterodin)  –Толтеродина      гидротартрат;      Оксибутинин (Oxybutynin) – Дриптан, Оксибутин; Солифенацин (Solifenacin) – Везикар и др.), а также инстилляций масел в мочевой пузырь.

РЕЗУЛЬТАТЫ ИССЛЕДОВАНИЯ И ИХ ОБСУЖДЕНИЕ

Анализ выделенной мочевой микрофлоры больных с хроническими циститами свидетельствует, что до лечения у больных выявлена значительная обсемененность мочи условно-патогенными микроорганизмами,  которые  являются  малочувствительными  к  наиболее  распространенным  антибиотикам.

При хроническом цистите в моче пациентов нами выявлены        микроорганизмы  –     стафилококки (Staphylococcus         haemolyticus,             Staphylococcus saprophyticus, Staphylococcus aureus) – 21,6%, энтерококки                  (Enterococcus                    faecalis,   Enterococcus faecium) – 17 %, кишечная палочка в 9,2% случаев. В остальных случаях в моче определялись – Klebsiella pneumonie, Citrobacter freundii, Citrobacter           diversus,                 Corinebacterium          pseudodiphtheriae, Pseudomonas aeruginosa, Enterobacter aerogenes, Enterobacter cloacae. Гемолитический стафилококк обнаружен в 12,3%, сапрофитный – в 3,1%, золотистый – в 6,2%. В посевах мочи при хроническом цистите выявлена ассоциация двух микрорганизмов в 20% случаев. Стафилококки были наиболее чувствительны   к   гентамицину   (33,3%),   ципрофлоксацину (28,5%), ванкомицину (28,5%), цефотаксиму (23,8%), линкомицину (19,0%), эритромицину  (14,2%)  и  оксациллину  (9,5%).  Обращает внимание  значительное  количество  выделенных штаммов  энтерококка,  которые  являются  основными  симбиотическими  организмами  кишечника человека. Наиболее важной особенностью энтерококков является их высокий уровень антибиотикорезистентности. Чувствительные штаммы могут быть подавлены ампициллином и ванкомицином. Выделенные нами энтерококки были чувствительны  к  ванкомицину  (14,2%),  ампициллину  (9,5%), гентамицину      (4,7%),                        цефатаксиму            (4,7%), норфлоксацину (4,7%), ципрофлоксацину (4,7%), стрептомицину  (4,7%).  Кишечная  палочка  была чувствительна к гентамицину (14,2%), амикацину (14,2%),   цефотаксиму   (9,5%),            норфлоксацину (9,5%), ципрофлоксацину (9,5%), котримоксазолу (9,5%), ванкомицину (4,7%).

 Соответственно    чувствительности   выделенной микрофлоры к антибиотикам мы определили оптимальный выбор антибиотиков для лечения хронических циститов у обследованных нами пациентов.

Для грамположительной флоры (стафилококки,  стрептококки,  коринебактерии,  энтерококки):

1. Фторхинолоны (ципрофлоксацин, офлоксацин, левофлоксацин).

2. Аминогликозиды (гентамицин, амикацин).

3. Ванкомицин.

4. Цефалоспорины III–IV поколения (цефотаксим, цефтриаксон, цефипим).

5. Ампициллин+сульбактам.

Для  грамотрицательной  микрофлоры  (энтеробактерии, псевдомонады):

1. Аминогликозиды (гентамицин, амикацин).

2. Цефалоспорины III–IV поколения (цефотаксим, цефтриаксон, цефипим).

3. Фторхинолоны (ципрофлоксацин, офлоксацин, левофлоксацин).

4. Ванкомицин.

Во  всех  случаях  лечения  хронического  цистита параллельно  с  назначением  антибиотиков  мы назначали  больным  нитрофураны  (фурагин  или фуромаг)  в  обычных  дозах,  исключением  были только те случаи, когда у пациентов наблюдалась аллергия к данной группе препаратов.

Приведенные данные свидетельствуют о низкой чувствительности выделенных микроорганизмов к антибиотикам, а наличие резистентных штаммов создает определенные трудности в лечении хронических циститов. В связи с этим нами была поставлена  цель  –  улучшить  результаты  лечения пациентов с хроническими циститами. Для решения поставленной задачи мы применили методику лечения, которая заключается в инстилляциях в мочевой пузырь антисептика Декасан (производитель ООО «Юрия-Фарм») в определенной концентрации и с определенной экспозицией в мочевом пузыре. Декасан (Decasanum) 1,10-Декаметиленбис        (N,N-диметил-ментоксикарбонилметил)аммония дихлорид. Бесцветная, прозрачная жидкость, 1 мл раствора содержит 0,2 мг декаметоксина.

Фармакологическое действие

Декасан  –  фунгицидный,  простоцидный,  вирусоцидный  и  антимикробный  препарат.  Механизм действия  Декасана  основан  на  его  способности нарушать  проницаемость  клеточной  мембраны (КМ) мишени, посредством соединения с липидными  структурами  в  области  их  фосфатидных групп. В результате изменения проницаемости КМ гомеостаз внутри клеток нарушается и наступает лизис клеток. Избирательность действия Декасана проявляется в неспособности концентрации на КМ клеток человека.

Изучено и подтверждено бактерицидное действие Декасана на большинство штаммов грамположительных и грамотрицательных микроорганизмов. Среди  них  стафилококки,  стрептококки,  дифтерийная и синегнойная палочки, капсульные бактерии  и  другие.  Фунгицидное  действие  Декасана проявляется  в  отношении  эпидермофитов,  трихофитов,   дрожжеподобных   грибов,   эритразмы, дрожжей, некоторых плесневидных грибов (пенициллы, аспергиллы). Антипротозойную эффективность Декасан проявляет в отношении лямблий и трихомонад. Устойчивых вирусов к действию препарата не выявлено.

 В процессе лечения Декасан повышает чувствительность   микроорганизмов   к   антибиотикам   и проявляет свою активность к штаммам, которые оказались  резистентными  к  проводимому  лечению. Неповрежденные слизистые оболочки и кожа препятствуют абсорбции препарата. В крови значимых концентраций Декасана не обнаружено.

Фармакокинетика

Препарат практически не всасывается слизистыми оболочками, неповрежденной кожей и раневой поверхностью. Особенности применения Декасана – длительное применение не вызывает каких либо    токсических   воздействий.    Подогревание препарата до 38 °С перед применением повышает эффективность его действия.

Наш способ применения раствора антисептика

Декасан

Для лечения хронических неосложненных циститов мы проводили инстилляции раствора Декасана в мочевой пузырь. Предварительно разводили препарат 1:5 стерильным физиологическим раствором  (первый  рабочий  инстилляционный  раствор Декасана – РИРД-1). В мочевой пузырь вводили стерильным уретральным катетером предварительно подготовленный раствор в количестве 20–40 мл с экспозицией в мочевом пузыре в течение 30–60 мин один раз в день. На курс лечения применяли  3–7  инстилляций  рабочего  раствора Декасана. При выраженном болевом и дизурическом синдроме во время инстилляции к РИРД-1 добавляли 20 мл 0,5% раствора новокаина и количество инстилляций увеличивалось до 10. При наличии  осложненного  хронического  цистита  с буллезной  или  буллезно-некротической  формой цистита,  после введения  РИРД-1 и 20 мл  0,5% раствора новокаина мы вводили в полость мочевого пузыря 5–10 мл облепихового масла. Совместно с инстилляциями РИРД-1 в мочевой пузырь, мы назначали всем больным антибактериальные препараты соответственно микробиологическому  исследованию  на  чувствительность  выделенных микробных культур к антибиотикам.

При  наличии  эпицистостомического  дренажа  у больных с гиперплазией предстательной железы или с опухолью мочевого пузыря промывание полости мочевого пузыря через эпицистостому проводили ежедневно раствором Декасана в разведении 1:5 (РИРД-1). В случаях гнойного поражения стенки мочевого пузыря промывание начинали в течение первых дней неразведенным 0,02% раствором Декасана, а в дальнейшем, после очищения полости мочевого пузыря от гнойного содержимого, промывание проводили РИРД-1.

В послеоперационный период у больных с гиперплазией  предстательной  железы  мы  проводили круглосуточное,   постоянное   орошение   полости мочевого пузыря и ложа предстательной железы после аденомпростатэктомии раствором Декасана в разведении 1:7 (второй рабочий инстилляционный раствор Декасана – РИРД-2) в течение недели после операции. В дальнейшем, после удаления системы для круглосуточного промывания, в послеоперационный   период,   полость   мочевого пузыря и ложе предстательной железы промывали РИРД-1 во время перевязок один или два раза в день в течение 7–14 дней.

Результаты    бактериологических    исследований мочи до и после лечения представлены в таблице.

Таблица. Бактериальная обсемененность мочи до и после лечения (средние числа) мкт/мл

Наш способ применения раствора антисептика Декасан

Группа

n

До леченияПосле леченияСтерильно после лечения, %

1-я

32

32,5 х 1042,0 х 102

50

2-я

25

34,5 х 10410,3 х 103

24

3-я

30

33,6 х 10410,0 х 103

20

После применения раствора Декасана в половине случаев посевы мочи оказались стерильными, в то же время у пациентов после применения раствора фурацилина и без инстилляций стерильные посевы получены в 24% и 20% случаев соответственно.  После  применения  раствора  Декасана микроорганизмы определялись в моче в концентрации  не  более  102–103  мкт/мл,  что  соответствует хорошему результату лечения, а обнаружение  незначительного  числа  микроорганизмов может быть связано с микробным загрязнением в момент сбора мочи. При взятии мочи на исследование при помощи стерильного уретрального катетера увеличивалось количество стерильных посевов мочи после лечения. Следует отметить изменение высеваемой микрофлоры в моче больных  после  применения  раствора  Декасана,  что требует дальнейшего диспансерного наблюдения за пациентами и проведения микробиологического исследования мочи в отдаленный период после лечения через 6–12 мес после окончания лечения.

 Осложнения при лечении раствором Декасана не наблюдались, за исключением чувства зуда в области половых органов у двух женщин (6,2%), которые купированы путем снижения концентрации раствора для инстилляций, назначения десенсибилизирующих препаратов, внутрипузырного введения облепихового масла в количестве 5–10 мл.

Клиническую эффективность оценивали по таким данным, как исчезновение боли и рези при мочеиспускании, уменьшение частоты мочеиспусканий до 5–6 в сутки, нормализация анализа мочи, отсутствие рецидива заболевания в течение 6 мес. В 1-й группе рецидив заболевания возник у 3 пациентов  (9,3%),  во  2-й  группе  –  у  8  пациентов (32%), в 3-й группе – у 8 пациентов (26%). Таким образом, необходимо отметить, что применение комплексной  методики       лечения         хронического неосложненного  бактериального  цистита  с  использованием инстилляций раствора Декасана в мочевой пузырь оказалось эффективным в 90,7% случаев, с применением инстилляций фурацилина – в 68% , а без применения местного лечения – в 74 % случаев.

Необходимо также отметить, что стоимость лечения раствором Декасана – 0,02% раствора декаметоксина (в разведении 1:5 или 1:7) в 2 раза дешевле, чем применение аптечного водного 0,02% раствора (1:5000) фурацилина.

Также для лечения хронического бактериального цистита при использовании инстилляций раствора антисептика Декасан уменьшалась концентрация вводимых в организм больного антибиотиков, что также снижало материальные затраты пациентов на лечение, аллергизацию организма и сводило до  минимума  возникновение  дисбактериозов  у пациентов.

ВЫВОДЫ

1. Раствор 0,02% декаметоксина – Декасан – эффективный антисептик для местного применения (инстилляций в мочевой пузырь) и оказывает выраженный клинический эффект у больных с хроническим бактериальным циститом.

2. Препарат Декасан в разведении 1:5 и 1:7 хорошо переносится больными, не вызывает негативных реакций при инстилляциях в мочевой пузырь. Эффективность  лечения  неосложненного  хронического бактериального цистита с использованием раствора Декасана составила 90,7%.

3. Декасан при комплексном лечении хронического  бактериального  цистита  различной  этиологии дает возможность уменьшить количество и дозы антибактериальных препаратов, что положительно  влияет на клинический и экономический  эффект лечения.

4.  Декасан  рекомендуют для  медицинского применения для инстилляций у больных с хроническим циститом различного генеза.

ЛИТЕРАТУРА

1.  Антимікробний лікарський препарат Декасан: стратегія і           тактика           застосування                     для профілактики  та  лікування  гнійно-запальних захворювань  /  В.Г.  Палій,  В.М.  Мороз,  М.Д. Желіба,  М.І.  Гуменюк,  К.М.  Сафронов,  В.О. Соболєв // Вісник Вінницького національного медичного університету. – 2004. – № 8 (2). – С. 449–452.

2.  Антисептичний препарат декасан у профілактиці  та  лікуванні  місцевих  гнійно-запальних уражень / Ю.І. Фещенко, М.І. Гуменюк, О.О.Мухін,   Н.М.  Недлінська,  Г.Б.  Капітан,   В.Г. Слабченко, Л.В. Чечель // Український хіміотерапевтичний журнал. – 2002. – № 1 (13). – С. 63–67.

3.  Бардычев М.С., Терехов О.В., Белая Н.С. Терапевтическая эффективность Гепона в лечении  лучевых  циститов  //  Лечащий  врач.  –2003. – № 10. – С. 61.

4.  Бухарин О.В. Персистенция патогенных бактерий. – М.: Медицина, 1999. – 368 с.

5.  Возіанов О.Ф., Люлько О.В. Урологія: Підручник.        –          Дніпропетровськ:      РВА    Дніпро-VAL,2002. – 830 с.

6.  Ефективність антисептичного препарату декасану / Палій Г.К., Ковальчук В.П., Деркач Н.М., Палій  Д.В.,  Крижановська  А.В.  //  Biomedikal and Biosocial Anthropology. – 2010. – № 15. – С. 8–11.

7.  Жорняк  О.І.  Дослідження  антибактеріальних властивостей  офлоксацину,  ампіциліну,  гентаміцину, меронему та декасану // Вісник Вінницького  національного  медичного  університету. – 2009. – № 13 (1/2). – С. 262–263.

8.  Іванов Д.Д. Інфекції сечових шляхів та сучасна антибактеріальна терапія // Медична газета«Здоров’я України». – Квітень 2012 р. – № 8 (285). – С. 32–33.

9.  Іванов Д.Д. Інфекції сечових шляхів та сучасна антибактеріальна терапія (продовження) // Медична  газета  «Здоров’я  України».  –  Травень 2012 р. – № 9 (286). – С. 50–51.

10. Игнатьева  В.И.,  Гуменюк  Г.Л.,  Капитан  Г.Б. Эффективность  антисептика  Декасан  в  комплексном  лечении  больных  с  обострением хронического  полипозно-гнойного  гаймороэтмоидита   //   Український   хіміотерапевтичний журнал. – 2010. – № 1–2 (23). – С. 54–56.

11. Коваленко І.М. Вплив несприятливих умов на протимікробні  властивості  декаметоксину  // Вісник  Вінницького  національного  медичного університету. – 2009. – № 13 (1/2). – С. 272.

12. Лоран О.Б. Лечение и профилактика хронического персистирующего цистита у женщин //Consilium medicum. – 2004. – № 7. – С. 10–20.

13. Лоран О.Б., Синякова Л.А., Косова И.В. Медикаментозное лечение интерстициального цистита // Медицинский совет. – 2008. – № 1–2.– С. 20–26.

14. Люлько А.В., Волкова Л.Н., Суходольская А.Е.Цистит. – 2-е изд., перераб. и доп. – К.: Здоровья, 1988. – 176 с.

15. Машковский М.Д. Лекарственные средства. –16-е изд., перераб., испр. и доп. – М.: Новая волна: Издатель Умеренков, 2010. – 1216 с.

16. Пасечников С.П., Никитин О.Д. Декасан в лечении инфицированных ран после урологических операций // Мистецтво лікування. – 2005.– № 6 (22). – С. 23–26.

17. Переверзев А.С. Инфекции в урологии: Монография. – Харьков.: Факт, 2006. – 352 с.

18. Пиптюк О.В., Чурпій І.К. Обгрунтування використання розчину декасану у хворих з перитонітом  //  Вісник  Вінницького  національного медичного університету. – 2010. – № 14 (2). – С. 287–289.

19. Порівняльне     дослідження     протимікробних властивостей антисептиків / В.М. Мороз, Г.К.Палій,   В.О.   Соболєв,   Н.М.   Шевчук,   О.М. Заріцький // Вісник Вінницького національного медичного університету. – 2002. – № 2. – С.315–320.

20. Результати  експериментального  і  клінічного дослідження        ефективності антисептичногопрепарату декасану / В.П. Ковальчук, М.І. Гуменюк,   В.В.   Біктіміров,   М.Д.   Желіба,  К.М. Сафронов // Вісник Вінницького національного медичного університету. – 2002. – № 2. – С.292–294.

21. Султанова   Е.А.   Интерстициальный   цистит: некотрые  вопросы  диагностики  и  лечения  // Русский медицинский журнал. – 2010. – № 29.– 1798–1801.

22. Тиктинский О.Л. Воспалительные неспецифические заболевания мочеполовых органов. – Л.:  Медицина,  Ленингр.  отделение,  1984.  –304 с.

23. Урология по Дональду Смиту. Под ред. Э. Танахо, Дж. Маканинча. Пер. с англ. – М., Практика, 2005. – 819 с.

24. Ухаль М.И., Ухаль Е.М. Фитотерапия в лечении хронического персистирующего цистита у больных сахарным диабетом // Медична газета «Здоров’я України». – Березень 2012 р. –№ 5 (282). – С. 64–65.

25. Constantinides C. et al. Prevention of recurrent bacterial cystitis by intravesical administration of hyaluronic acid: a pilot study. – B.J.U.Int., 2004; 93: 426.

26. Droller MJ, Saral K, Santos G: Prevention of cyclophos-phamideinduced   hemorrhagic   cystitis. Urology, 1982; 20:256.

27. Duncan JL, Schaeffer AJ: Do infectious agents cause interstitial cystitis? Urology, 1997; 49(5ASuppl):48.

28. Levenback C et al.: Hemorragic cystitis following radiotherapy for stage Ib cancer of the cervix. Gynecol. Oncol., 1994; 55:206.

29. Maatman TJ et al.: Radiationinduced cystitis following   intracavitary   irradiation   for   superficial bladder cancer. J.Urol., 1983; 130:338.

30. Parsons  CL  et  al.:  A  quantitatively  controlled method to study prospectively interstitial cystitis and demonstrate the efficacy of pentosanpolysulfate. J.Urol., 1993; 150:845.

31. Parsons CL, Mulholland SG: Successful therapy of  interstitial  cystitis  with  pentosanpolysulfate. J.Urol., 1987; 138:513.

32. Parsons CL, Schmidt JD, Pollen JJ: Successful treatment of interstitial cystitis with sodium pentosanpolysulfate. J.Urol., 1983; 130:51.

Комментировать

Нажмите для комментария