Данные применения антисептика Декасан в комплексном лечении больных с обострением хронического цистита.
С.В. Берестенко
Специализированная медико-санитарная часть №9, г. Желтые Воды
В работе представлены данные применения антисептика Декасан в комплексном лечении больных с обострением хронического цистита.
Ключевые слова: декаметоксин, Декасан, хронический цистит.
Хронический цистит – хронический воспалительный процесс в стенке мочевого пузыря, наиболее частое осложнение острых заболеваний мочевого пузыря, мочеиспускательного канала, почек и половых органов как у мужчин, так и у женщин. Нередко его диагностируют как сопутствующую патологию у больных сахарным диабетом, при различной гинекологической патологии, при хронических заболеваниях пищеварительного тракта, спинного мозга, нейропатиях [5, 14, 22]. Осложнением лучевой терапии довольно часто становятся лучевые циститы. Общепринято их подразделять на неосложненные (катаральный, эрозивнодесквамативный и атрофический цистит) и осложненные формы (язвенно-некротический, профузное кровотечение вплоть до тампонады, инкрустированный цистит, вторично-сморщенный мочевой пузырь и его свищи) [3, 28, 29].
Наиболее полная классификация циститов представлена А.В. Люлько [14], который в зависимости от характера и глубины морфологических изменений подразделяет хронический цистит на катаральный, язвенный, полипозный, кистозный, эмфизематозный, эозинофильный, инкрустирующий и некротический. Хроническим цистит считают при возникновении двух обострений в течение 6 мес или трех в течение года. Особенно часто урологам приходится встречаться с послеоперационными, лучевыми, катетер-ассоциированными хроническими циститами, связанными с наличием устойчивой госпитальной и условно-патогенной микрофлоры.
К основным симптомам цистита относят дизурические явления (частые болезненные позывы к мочеиспусканию) и микро или макрогематурии, обусловленные выраженным воспалительным процессом стенки мочевого пузыря.
У больных хроническим циститом часто наблюдаются нарушения уродинамики, а также снижение неспецифической и специфической иммунной защиты, что приводит к образованию бактериальных пленок в складках слизистой оболочки мочевого пузыря [4, 24]. Достоверно известно, что бактерии в организме существуют в двух формах: в виде микробного планктона (МП) и микробных биопленок (МБП). МП свободно плавает в биологических жидкостях организма и не связан со слизистой оболочкой, он способен обсеменять слизистую оболочку мочевого пузыря и вызывать обширный воспалительный процесс с классической картиной острого цистита. Планктоновые бактерии уязвимы для антибактериальных препаратов, поэтому острый цистит достаточно эффективно лечат короткими курсами антибиотиков. При хроническом цистите бактерии организуются в самостоятельное структурированное сообщество, сбалансированное относительно видового состава бактерий, в котором существует функциональное разделение его членов, которые способны передавать генетическую информацию. Микробные тела, образующие МБП, формируют полимерную оболочку – матрикс, – состоящий из экзополисахаридов (90%), нуклеиновых кислот и протеинов, иногда грибов, и плотно прилегающий к поверхности субстрата. Бактерии, организованные в МБП, лучше адаптируются к воздействию антибиотиков, чем бактерии в форме планктона. Они способны выдерживать концентрации антибиотиков, более чем в 100 раз превышающие бактерицидную концентрацию для планктоновой формы бактерий. Причинами суперустойчивости микроорганизмов в МБП к антибиотикам являются следующие факторы: способность синтезировать ферменты, разрушающие антибиотик; проникновение антибиотиков внутрь МБП замедляется из-за мукополисахаридного «плаща» биопленки; дезактивация (нейтрализация) позитивно заряженного антибиотика негативно заряженным полимером матрикса; переход бактерий в состояние своеобразного анабиоза и задержки репликации («задержанная мультипликация» – suspended animation); сужение водных канальцев и, как следствие, замедление или приостановка пенетрации антибиотика в глубокие слои МБП. Все это приводит к тому, что антибиотик уничтожает в МБП только поверхностно расположенные микробные тела и МП. Поэтому в определенных условиях происходит «возрождение» МБП с резерва глубоко расположенных слоев бактерий и возникает рецидив обострения воспалительного процесса при хроническом цистите[24].
Учитывая значительную распространенность хронических циститов, наличие различных факторов, отягощающих течение воспалительного процесса в стенке мочевого пузыря, снижение иммунной реактивности организма на фоне персистирования устойчивой микрофлоры, а также наличие сопутствующей патологии, необходимо соблюдать определенные принципы лечения хронических циститов [8, 9, 12, 13, 17, 21, 27]:
1. Антибактериальная терапия с учетом чувствительности мочи к антибактериальным препаратам.
2. Иммунотерапия.
3. Местное лечение (инстилляции в мочевой пузырь антибиотиков, анальгетиков, глюкокортикоидов, антисептиков, масел, обволакивающих препаратов, стимуляторов регенерации и микроциркуляции в стенке мочевого пузыря и др.).
4. Физиотерапия в различных вариациях (электрофорез, лазеротерапия, электростимуляция и др.).
5. Лечение сопутствующих заболеваний (сахарного диабета, опущения мочевого пузыря, недержания мочи, гиперплазии предстательной железы, хронического уретрита и простатита и др.).
Лечение хронического цистита представляет большую проблему, поскольку ликвидировать патогенные бактерии, организованные в биопленки, с помощью традиционной антибиотикотерапии практически нереально. Это объясняется также повреждением бактериальными пленками гликозаминогликанового (ГАГ) слоя, который покрывает поверхность переходного эпителия мочевого пузыря и необходимостью его восстановления в процессе лечения [17, 22, 23]. Этот слой играет существенную роль в защите эпителиальных клеток мочевого пузыря от токсических компонентов мочи. При повреждении ГАГ-слоя происходит прямой контакт компонентов мочи с эпителиальными клетками; в этих условиях усиливаются как бактериальная адгезия, так и воспалительные процессы в стенке мочевого пузыря. ГАГ-слой может повреждаться растворимыми факторами вирулентности, продуцируемыми E.coli. Восстановить нарушенный ГАГ-слой можно с помощью различных методов создания покровного слоя, включая применение гепарина, перорального пентосанполисульфата и гиалуроновой кислоты [14,17, 22, 23, 30–32].
В качестве эффективного средства, направленного на ликвидацию дефектов ГАГ-слоя мочевого пузыря рекомендуется применять препарат – Uropol-S [17].
В одном из исследований приняли участие больные, у которых были неэффективны гидродилатация и введение в мочевой пузырь диметилсульфоксида. Было установлено, что при интерстициальном цистите на поверхности слизистой оболочки отсутствует ГАГ-слой, в норме защищающих ее от действия мочи. Больные получали пентосан, 50 мг внутрь 4 раза в сутки или по 150 мг внутрь 2 раза в сутки в течение 4–8 нед. Двадцать из 24 больных отметили уменьшение выраженности всех симптомов (императивных позывов, учащенного мочеиспускания и никтурии) на 80%, 2 больных – на 50–80%. У этих больных самочувствие продолжало улучшаться и после завершения лечения. У 2 больных оно оказалось неэффективным [23].
Наряду с антибактериальной терапией используют инстилляции различных препаратов в мочевой пузырь [12–14, 17, 23]. При буллезной, буллезнофибринозной и гранулярных формах цистита применяют инстилляции препаратов серебра с новокаином, колларгол в разведении 1:5000, 1:1000 в соотношении 1:1 с 0,5% раствором новокаина, в общем количестве 40–50 мл, введение раствора диоксидина, димексида с новокаином. Применяют инстилляцию мочевого пузыря 20 мл 40% раствора димексида 1 раз в сутки или через день, всего на курс 10–15 инстилляций [14]. Внутрипузырные инстилляции данных препаратов используют давно, но они не утратили своей эффективности и до настоящего времени.
При катаральной и геморрагической формах – инстилляции масляных растворов (синтомициновой эмульсии, масел шиповника и облепихи) [14]. При абактериальном цистите рекомендуют вводить в мочевой пузырь 0,1% раствор оксихлорозена [23].
Хорошие результаты получены от введения гепарина по 20 000 ЕД в 1000 мл 5% раствора глюкозы внутривенно капельно в течение 4 сут. Рекомендовано 2 курса лечения с 4-дневными интервалами. Гепарин применяли местно путем инстилляций (20 000 ЕД гепарина в 2 мл раствора натрия хлорида изотонического в мочевой пузырь) [14].
Отмечено значительное улучшение уже после первого 4-дневного курса ежедневных внутривенных капельных вливаний 5000–10 000 ЕД гепарина у 70% женщин с интерстициальным циститом. У остальных больных уменьшалась дизурия в конце второго курса 4-дневного лечения, проводимого с интервалом 4 дня [22].
Инстилляции гиалуроновой кислоты женщинам с рецидивными циститами (40 мг в 50 мл буферного раствора) еженедельно в течение 4 нед, а затем ежемесячно в течение 4 мес оказались эффективными – в течение 5-месячного периода лечения ни у одной из 40 женщин не было отмечено рецидивов инфекции мочевого пузыря [25]. За 12,4 мес наблюдения отмечено, что число рецидивов уменьшилось в 13 раз, а их частота – в 14,3 раза. Инстилляции гиалуроновой кислоты в мочевой пузырь могут стать альтернативой применению антибиотиков при хронических циститах [17].
Эффективным средством для лечения хронических циститов является диметилсульфоксид (ДМСО, димексид), обладающий способностью проникать через биологические мембраны и оказывающий противовоспалительное, анальгетическое, антисептическое и фибринолитическое действие. В мочевой пузырь вводят 30–50 мл 50% раствора ДМСО, разбавленного 0,5% раствором новокаина на 15–30 мин. Инстилляцию проводят 1–2 раза в неделю на протяжении 4–8 нед. Для усиления эффекта может быть добавлен диоксидин [17]. Для снижения риска рецидивов одна группа пациентов получала внутрипузырно гепарин в дозе 10 000 ЕД каждый месяц после курса лечения ДМСО, вторая группа – только ДМСО. В группе с применением гепарина внутрипузырно удалось добиться снижения рецидивов на 20% по сравнению с 52% в группе с монотерапией ДМСО [12, 13]. Хорошие результаты получены при применении внутрипузырного введения гепарина вместе с гидрокортизоном в сочетании с оксибутинином и толтеродином [12, 13, 23].
Бывает, что симптомы хронического цистита облегчает введение в мочевой пузырь 50% раствор ДМСО, 50 мл 1 раз в 2 нед. Раствор оставляют в мочевом пузыре на 15 мин. По данным авторов, более эффективно применение 0,4% раствора оксихлорозена. Мочевой пузырь заполняют раствором под давлением 10 см вод.ст. Лечение проводят под общей анестезией. Перед ним обязательна цистография, так как при пузырномочеточниковом рефлюксе может развиться фиброз мочеточника [23].
Хлорпактин – препарат, использовавшийся для лечения туберкулеза, назначают внутрипузырно тем пациентам, которые безуспешно лечились димексидом. Хлорпактин в виде 0,4% раствора вводили под давлением 10 см вод.ст. с перерывом 1 мес. Частота эффективности составляет от 50% до 72%.
Применение вакцины БЦЖ в виде 6-недельного курса оказалось эффективным в 60%, хотя результаты исследования были статистически недостоверными [12, 13].
К препаратам, используемым для восстановления ГАГ-слоя уротелия, относятся:
1. Гепарин, применяемый в виде инстилляций по 10 000 ЕД в 10 мл стерильной воды, три раза в неделю в течение 3 мес. Эффективность – более 50% [17, 23].
2. Пентозанполисульфат (PPS) – гликопротеид, применяемый внутрипузырно по 300 мг в 50 мл физиологического раствора два раза в неделю в течение 3 мес [17, 30–32].
3. Гиалуроновая кислота (цистистат). Сообщено об улучшении у 56% через 4 нед лечения и 71% через 7 нед [17, 25].
4. Хондроитин сульфат (Urospol-S) – данный препарат также восстанавливает ГАГ-слой. Вводится внутрипузырно 40 мл 0,2% раствора. Первые 4 нед – 1 раз в неделю, затем 1 раз в месяц в течение 12 мес [17].
При лучевых циститах методом выбора является местное применение в виде инстилляций в полость мочевого пузыря 5–10% раствора ДМСО. Благоприятное действие димексида подтверждено при лечении более 800 больных с лучевыми повреждениями мочевого пузыря [3].
Лечение обычно начинали примерно через 3–4 нед после биопсии стенки мочевого пузыря с введения цитодеструктивных препаратов (колларгола или ДМСО в концентрации не выше 10%) [21]. В терапии интерстициального цистита авторы не придерживались достаточно агрессивной цитодеструктивной методики (использование 30–50% раствора ДМСО или 1–2% раствора нитрата серебра), которую рекомендуют другие авторы [12–14, 17, 23], так как опыт показал, что испытываемый при этом пациенткой дискомфорт превышает положительный ближайший и отдаленный эффект от лечения. После 10 процедур цитодеструктивной терапии переходили к введению препаратов, усиливающих синтез мукополисахаридов клетками уротелия (гепарин по 40 000 ЕД, а также средств, способствующих ускорению репаративных процессов эпителия мочевого пузыря (гепон и актовегин последовательно)) [21].
Особое внимание на данном этапе лечения авторы [3, 21] уделяют применению гепона, который вводили ежедневно в течение 5–10 сут по 0,002 г, предварительно растворив его в 10 мл физиологического раствора.
Гепон – препарат, созданный совместно английскими учеными и сотрудниками ГНЦ Институт иммунологии ФМБА (рег. номер 000015/04–2001). Он представляет собой синтетический пептид, состоящий из 14 аминокислотных остатков с молекулярной массой 1818 дальтон, который оказывает комплексное иммуномодулирующее и противовирусное действие. Для лечения лучевых циститов местно применяли Гепон в виде инстилляции мочевого пузыря 0,04% раствором (содержимое флакона Гепона 0,002 г растворяли перед применением в 5 мл стерильного физиологического раствора). Первые 10–12 дней орошение проводили дважды в день, в дальнейшем переходили на однократные инстилляции [3].
У отдельных больных после лучевой терапии по поводу рака шейки матки или рака мочевого пузыря возникает геморрагический цистит, нередко сопровождающийся обильными кровотечениями. Это осложнение наблюдается и при лечении циклофосфамидом. При этом эффективно введение в мочевой пузырь 3,9% раствора формальдегида (его готовят путем десятикратного разведения стандартного 39% раствора). После заполнения мочевого пузыря катетер пережимают на 30 мин, а затем промывают мочевой пузырь 10% раствором этанола. При необходимости процедуру проводят еще 1–2 раза через день [23, 26].
При неэффективности формальдегида или серебра нитрата остановки кровотечения можно добиться с помощью непрерывной внутривенной инфузии вазопрессина. С той же целью можно провести селективную эмболизацию внутренних подвздошных артерий [5, 23].
В литературе приведены также результаты по внутрипузырному введению резиниферотоксина (RTX), ботулинического токсина (ВТА), оксибутинина в дозе 10 мг, масла чайного дерева, пункционное введение в околопузырную клетчатку озоно-кислородной смеси с одновременной внутрипузырной инстилляцией масел «Озонид», однако требуется проведение дальнейших исследований для решения вопроса об их эффективности [12, 13, 21]. Таким образом, несмотря на многообразие препаратов, применяемых для лечения хронического цистита, ни один из них не является полностью эффективным.
Бесконтрольное применение антибиотиков привело к возникновению хронических циститов с устойчивой микрофлорой в слизистой оболочке мочевого пузыря, трудно поддающейся лечению с использованием известных методик и антимикробных препаратов. Поэтому хронический цистит рассматривается как заболевание, требующее глубокого клинического, специализированного урологического, микробиологического, иммунологического обследования и комплексного лечения с использованием современных методик и лекарственных препаратов. В литературе встречается множество новых антисептических препаратов, в частности отечественный антисептик Декасан, который начали применять для лечения гнойных ран в хирургии и других областях медицины, но данных по эффективности его при хроническом цистите мы не встретили [1, 2, 6, 7, 10, 11, 15, 16,18–20].
Целью исследования явилось изучение эффективности внутрипузырного применения отечественного антисептика Декасан у больных с обострением хронического неосложненного бактериального цистита.
МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ
Обследованы 32 пациента с обострением хронического цистита (мужчины и женщины) в возрасте 57–86 лет, которым проводили внутрипузырное введение раствора антисептика Декасан (0,02% раствора декаметоксина) – 1-я группа. Средний возраст участников 1-й группы составил 59,6 года, мужчин – 10, женщин – 22. Раствор Декасана вводили в мочевой пузырь в разных концентрациях в зависимости от вида цистита.
2-я группа (25 больных) – пациенты с хроническим циститом, которым в мочевой пузырь вводили раствор фурацилина. Средний возраст в этой группе составил 58,4 года, мужчин – 20, женщин –5. Стандартный аптечный раствор фурацилина в виде водного 0,02% раствора (1:5000) вводили в мочевой пузырь или применяли для промывания полости мочевого пузыря через эпицистостомический дренаж.
Контрольную группу (3-ю группу) составили 30 больных хроническим циститом, которым внутрипузырные инстилляции не проводили. Средний возраст – 56,4 года, мужчин – 11, женщин – 19.
В 1-й, 2-й и 3-й группах проводили антибактериальную терапию соответственно микробиологическим посевам мочи с определением чувствительности выделенных культур к антибиотикам, в обязательном порядке назначали нитрофураны (фурагин или фуромаг).
Больные с хроническим циститом обследованы клинически, всем пациентам проведены микробиологические исследования мочи до и после курса лечения. Определяли микробное число, вид и количество выделенных штаммов, их чувствительность к антибиотикам.
Результаты проведенного лечения оценивали по клиническим параметрам, выраженности болевого и дизурического синдрома, лабораторным показателям анализов мочи, степени микробной обсемененности мочи, по количеству стерильных посевов мочи после лечения, по длительности проводимого лечения. Хронический цистит наблюдали при разной патологии – послеоперационный цистит, постлучевой при опухолях мочевого пузыря, цистит у мужчин при гиперплазии предстательной железы, осложненной острой или хронической задержкой мочи с дренированием мочевого пузыря уретральным катетером или эпицистостомой, а также хронический цистит у женщин, сопровождающийся недержанием мочи.
Комбинированное лечение хронического цистита с использованием антисептического раствора Декасан применили для лечения 32 пациентов. До начала лечения у пациентов был выражен болевой синдром в нижних отделах живота, в промежности, а также рези при мочеиспускании или в конце мочеиспускания, у женщин наблюдалось недержание мочи. Женщинам при ургентном недержании мочи назначали Уротол – толтеродина гидротартрат (Urotol – фирма Zentiva) по 1 мг два раза в день внутрь в течение месяца. Уротол назначали пациентам во всех трех группах при наличии частоты мочеиспусканий свыше 7–8 в сутки и более 2–3 мочеиспусканий ночью, при выраженном синдроме нижних мочевых путей.
Таким образом, наша методика лечения хронического цистита заключается в комплексном применении:
1. Внутрипузырных инстилляций антисептика Декасан в различных концентрациях и с различной экспозицией в зависимости от выраженности воспалительного процесса в мочевом пузыре при бактериальном хроническом цистите.
2. Антибактериальной терапии в соответствии с микробиологическим посевом мочи и чувствительностью выделенной микрофлоры к химиотерапевтическим препаратам.
3. Симптоматического лечения с использованием десенсибилизирующих, антигистаминных, обезболивающих препаратов, М-холиноблокаторов и препаратов, снижающих тонус мочевых путей (Уротол (Tolterodin) –Толтеродина гидротартрат; Оксибутинин (Oxybutynin) – Дриптан, Оксибутин; Солифенацин (Solifenacin) – Везикар и др.), а также инстилляций масел в мочевой пузырь.
РЕЗУЛЬТАТЫ ИССЛЕДОВАНИЯ И ИХ ОБСУЖДЕНИЕ
Анализ выделенной мочевой микрофлоры больных с хроническими циститами свидетельствует, что до лечения у больных выявлена значительная обсемененность мочи условно-патогенными микроорганизмами, которые являются малочувствительными к наиболее распространенным антибиотикам.
При хроническом цистите в моче пациентов нами выявлены микроорганизмы – стафилококки (Staphylococcus haemolyticus, Staphylococcus saprophyticus, Staphylococcus aureus) – 21,6%, энтерококки (Enterococcus faecalis, Enterococcus faecium) – 17 %, кишечная палочка в 9,2% случаев. В остальных случаях в моче определялись – Klebsiella pneumonie, Citrobacter freundii, Citrobacter diversus, Corinebacterium pseudodiphtheriae, Pseudomonas aeruginosa, Enterobacter aerogenes, Enterobacter cloacae. Гемолитический стафилококк обнаружен в 12,3%, сапрофитный – в 3,1%, золотистый – в 6,2%. В посевах мочи при хроническом цистите выявлена ассоциация двух микрорганизмов в 20% случаев. Стафилококки были наиболее чувствительны к гентамицину (33,3%), ципрофлоксацину (28,5%), ванкомицину (28,5%), цефотаксиму (23,8%), линкомицину (19,0%), эритромицину (14,2%) и оксациллину (9,5%). Обращает внимание значительное количество выделенных штаммов энтерококка, которые являются основными симбиотическими организмами кишечника человека. Наиболее важной особенностью энтерококков является их высокий уровень антибиотикорезистентности. Чувствительные штаммы могут быть подавлены ампициллином и ванкомицином. Выделенные нами энтерококки были чувствительны к ванкомицину (14,2%), ампициллину (9,5%), гентамицину (4,7%), цефатаксиму (4,7%), норфлоксацину (4,7%), ципрофлоксацину (4,7%), стрептомицину (4,7%). Кишечная палочка была чувствительна к гентамицину (14,2%), амикацину (14,2%), цефотаксиму (9,5%), норфлоксацину (9,5%), ципрофлоксацину (9,5%), котримоксазолу (9,5%), ванкомицину (4,7%).
Соответственно чувствительности выделенной микрофлоры к антибиотикам мы определили оптимальный выбор антибиотиков для лечения хронических циститов у обследованных нами пациентов.
Для грамположительной флоры (стафилококки, стрептококки, коринебактерии, энтерококки):
1. Фторхинолоны (ципрофлоксацин, офлоксацин, левофлоксацин).
2. Аминогликозиды (гентамицин, амикацин).
3. Ванкомицин.
4. Цефалоспорины III–IV поколения (цефотаксим, цефтриаксон, цефипим).
5. Ампициллин+сульбактам.
Для грамотрицательной микрофлоры (энтеробактерии, псевдомонады):
1. Аминогликозиды (гентамицин, амикацин).
2. Цефалоспорины III–IV поколения (цефотаксим, цефтриаксон, цефипим).
3. Фторхинолоны (ципрофлоксацин, офлоксацин, левофлоксацин).
4. Ванкомицин.
Во всех случаях лечения хронического цистита параллельно с назначением антибиотиков мы назначали больным нитрофураны (фурагин или фуромаг) в обычных дозах, исключением были только те случаи, когда у пациентов наблюдалась аллергия к данной группе препаратов.
Приведенные данные свидетельствуют о низкой чувствительности выделенных микроорганизмов к антибиотикам, а наличие резистентных штаммов создает определенные трудности в лечении хронических циститов. В связи с этим нами была поставлена цель – улучшить результаты лечения пациентов с хроническими циститами. Для решения поставленной задачи мы применили методику лечения, которая заключается в инстилляциях в мочевой пузырь антисептика Декасан (производитель ООО «Юрия-Фарм») в определенной концентрации и с определенной экспозицией в мочевом пузыре. Декасан (Decasanum) 1,10-Декаметиленбис (N,N-диметил-ментоксикарбонилметил)аммония дихлорид. Бесцветная, прозрачная жидкость, 1 мл раствора содержит 0,2 мг декаметоксина.
Фармакологическое действие
Декасан – фунгицидный, простоцидный, вирусоцидный и антимикробный препарат. Механизм действия Декасана основан на его способности нарушать проницаемость клеточной мембраны (КМ) мишени, посредством соединения с липидными структурами в области их фосфатидных групп. В результате изменения проницаемости КМ гомеостаз внутри клеток нарушается и наступает лизис клеток. Избирательность действия Декасана проявляется в неспособности концентрации на КМ клеток человека.
Изучено и подтверждено бактерицидное действие Декасана на большинство штаммов грамположительных и грамотрицательных микроорганизмов. Среди них стафилококки, стрептококки, дифтерийная и синегнойная палочки, капсульные бактерии и другие. Фунгицидное действие Декасана проявляется в отношении эпидермофитов, трихофитов, дрожжеподобных грибов, эритразмы, дрожжей, некоторых плесневидных грибов (пенициллы, аспергиллы). Антипротозойную эффективность Декасан проявляет в отношении лямблий и трихомонад. Устойчивых вирусов к действию препарата не выявлено.
В процессе лечения Декасан повышает чувствительность микроорганизмов к антибиотикам и проявляет свою активность к штаммам, которые оказались резистентными к проводимому лечению. Неповрежденные слизистые оболочки и кожа препятствуют абсорбции препарата. В крови значимых концентраций Декасана не обнаружено.
Фармакокинетика
Препарат практически не всасывается слизистыми оболочками, неповрежденной кожей и раневой поверхностью. Особенности применения Декасана – длительное применение не вызывает каких либо токсических воздействий. Подогревание препарата до 38 °С перед применением повышает эффективность его действия.
Наш способ применения раствора антисептика
Декасан
Для лечения хронических неосложненных циститов мы проводили инстилляции раствора Декасана в мочевой пузырь. Предварительно разводили препарат 1:5 стерильным физиологическим раствором (первый рабочий инстилляционный раствор Декасана – РИРД-1). В мочевой пузырь вводили стерильным уретральным катетером предварительно подготовленный раствор в количестве 20–40 мл с экспозицией в мочевом пузыре в течение 30–60 мин один раз в день. На курс лечения применяли 3–7 инстилляций рабочего раствора Декасана. При выраженном болевом и дизурическом синдроме во время инстилляции к РИРД-1 добавляли 20 мл 0,5% раствора новокаина и количество инстилляций увеличивалось до 10. При наличии осложненного хронического цистита с буллезной или буллезно-некротической формой цистита, после введения РИРД-1 и 20 мл 0,5% раствора новокаина мы вводили в полость мочевого пузыря 5–10 мл облепихового масла. Совместно с инстилляциями РИРД-1 в мочевой пузырь, мы назначали всем больным антибактериальные препараты соответственно микробиологическому исследованию на чувствительность выделенных микробных культур к антибиотикам.
При наличии эпицистостомического дренажа у больных с гиперплазией предстательной железы или с опухолью мочевого пузыря промывание полости мочевого пузыря через эпицистостому проводили ежедневно раствором Декасана в разведении 1:5 (РИРД-1). В случаях гнойного поражения стенки мочевого пузыря промывание начинали в течение первых дней неразведенным 0,02% раствором Декасана, а в дальнейшем, после очищения полости мочевого пузыря от гнойного содержимого, промывание проводили РИРД-1.
В послеоперационный период у больных с гиперплазией предстательной железы мы проводили круглосуточное, постоянное орошение полости мочевого пузыря и ложа предстательной железы после аденомпростатэктомии раствором Декасана в разведении 1:7 (второй рабочий инстилляционный раствор Декасана – РИРД-2) в течение недели после операции. В дальнейшем, после удаления системы для круглосуточного промывания, в послеоперационный период, полость мочевого пузыря и ложе предстательной железы промывали РИРД-1 во время перевязок один или два раза в день в течение 7–14 дней.
Результаты бактериологических исследований мочи до и после лечения представлены в таблице.
Таблица. Бактериальная обсемененность мочи до и после лечения (средние числа) мкт/мл
Наш способ применения раствора антисептика Декасан
Группа | n | До лечения | После лечения | Стерильно после лечения, % |
1-я | 32 | 32,5 х 104 | 2,0 х 102 | 50 |
2-я | 25 | 34,5 х 104 | 10,3 х 103 | 24 |
3-я | 30 | 33,6 х 104 | 10,0 х 103 | 20 |
После применения раствора Декасана в половине случаев посевы мочи оказались стерильными, в то же время у пациентов после применения раствора фурацилина и без инстилляций стерильные посевы получены в 24% и 20% случаев соответственно. После применения раствора Декасана микроорганизмы определялись в моче в концентрации не более 102–103 мкт/мл, что соответствует хорошему результату лечения, а обнаружение незначительного числа микроорганизмов может быть связано с микробным загрязнением в момент сбора мочи. При взятии мочи на исследование при помощи стерильного уретрального катетера увеличивалось количество стерильных посевов мочи после лечения. Следует отметить изменение высеваемой микрофлоры в моче больных после применения раствора Декасана, что требует дальнейшего диспансерного наблюдения за пациентами и проведения микробиологического исследования мочи в отдаленный период после лечения через 6–12 мес после окончания лечения.
Осложнения при лечении раствором Декасана не наблюдались, за исключением чувства зуда в области половых органов у двух женщин (6,2%), которые купированы путем снижения концентрации раствора для инстилляций, назначения десенсибилизирующих препаратов, внутрипузырного введения облепихового масла в количестве 5–10 мл.
Клиническую эффективность оценивали по таким данным, как исчезновение боли и рези при мочеиспускании, уменьшение частоты мочеиспусканий до 5–6 в сутки, нормализация анализа мочи, отсутствие рецидива заболевания в течение 6 мес. В 1-й группе рецидив заболевания возник у 3 пациентов (9,3%), во 2-й группе – у 8 пациентов (32%), в 3-й группе – у 8 пациентов (26%). Таким образом, необходимо отметить, что применение комплексной методики лечения хронического неосложненного бактериального цистита с использованием инстилляций раствора Декасана в мочевой пузырь оказалось эффективным в 90,7% случаев, с применением инстилляций фурацилина – в 68% , а без применения местного лечения – в 74 % случаев.
Необходимо также отметить, что стоимость лечения раствором Декасана – 0,02% раствора декаметоксина (в разведении 1:5 или 1:7) в 2 раза дешевле, чем применение аптечного водного 0,02% раствора (1:5000) фурацилина.
Также для лечения хронического бактериального цистита при использовании инстилляций раствора антисептика Декасан уменьшалась концентрация вводимых в организм больного антибиотиков, что также снижало материальные затраты пациентов на лечение, аллергизацию организма и сводило до минимума возникновение дисбактериозов у пациентов.
ВЫВОДЫ
1. Раствор 0,02% декаметоксина – Декасан – эффективный антисептик для местного применения (инстилляций в мочевой пузырь) и оказывает выраженный клинический эффект у больных с хроническим бактериальным циститом.
2. Препарат Декасан в разведении 1:5 и 1:7 хорошо переносится больными, не вызывает негативных реакций при инстилляциях в мочевой пузырь. Эффективность лечения неосложненного хронического бактериального цистита с использованием раствора Декасана составила 90,7%.
3. Декасан при комплексном лечении хронического бактериального цистита различной этиологии дает возможность уменьшить количество и дозы антибактериальных препаратов, что положительно влияет на клинический и экономический эффект лечения.
4. Декасан рекомендуют для медицинского применения для инстилляций у больных с хроническим циститом различного генеза.
ЛИТЕРАТУРА
1. Антимікробний лікарський препарат Декасан: стратегія і тактика застосування для профілактики та лікування гнійно-запальних захворювань / В.Г. Палій, В.М. Мороз, М.Д. Желіба, М.І. Гуменюк, К.М. Сафронов, В.О. Соболєв // Вісник Вінницького національного медичного університету. – 2004. – № 8 (2). – С. 449–452.
2. Антисептичний препарат декасан у профілактиці та лікуванні місцевих гнійно-запальних уражень / Ю.І. Фещенко, М.І. Гуменюк, О.О.Мухін, Н.М. Недлінська, Г.Б. Капітан, В.Г. Слабченко, Л.В. Чечель // Український хіміотерапевтичний журнал. – 2002. – № 1 (13). – С. 63–67.
3. Бардычев М.С., Терехов О.В., Белая Н.С. Терапевтическая эффективность Гепона в лечении лучевых циститов // Лечащий врач. –2003. – № 10. – С. 61.
4. Бухарин О.В. Персистенция патогенных бактерий. – М.: Медицина, 1999. – 368 с.
5. Возіанов О.Ф., Люлько О.В. Урологія: Підручник. – Дніпропетровськ: РВА Дніпро-VAL,2002. – 830 с.
6. Ефективність антисептичного препарату декасану / Палій Г.К., Ковальчук В.П., Деркач Н.М., Палій Д.В., Крижановська А.В. // Biomedikal and Biosocial Anthropology. – 2010. – № 15. – С. 8–11.
7. Жорняк О.І. Дослідження антибактеріальних властивостей офлоксацину, ампіциліну, гентаміцину, меронему та декасану // Вісник Вінницького національного медичного університету. – 2009. – № 13 (1/2). – С. 262–263.
8. Іванов Д.Д. Інфекції сечових шляхів та сучасна антибактеріальна терапія // Медична газета«Здоров’я України». – Квітень 2012 р. – № 8 (285). – С. 32–33.
9. Іванов Д.Д. Інфекції сечових шляхів та сучасна антибактеріальна терапія (продовження) // Медична газета «Здоров’я України». – Травень 2012 р. – № 9 (286). – С. 50–51.
10. Игнатьева В.И., Гуменюк Г.Л., Капитан Г.Б. Эффективность антисептика Декасан в комплексном лечении больных с обострением хронического полипозно-гнойного гаймороэтмоидита // Український хіміотерапевтичний журнал. – 2010. – № 1–2 (23). – С. 54–56.
11. Коваленко І.М. Вплив несприятливих умов на протимікробні властивості декаметоксину // Вісник Вінницького національного медичного університету. – 2009. – № 13 (1/2). – С. 272.
12. Лоран О.Б. Лечение и профилактика хронического персистирующего цистита у женщин //Consilium medicum. – 2004. – № 7. – С. 10–20.
13. Лоран О.Б., Синякова Л.А., Косова И.В. Медикаментозное лечение интерстициального цистита // Медицинский совет. – 2008. – № 1–2.– С. 20–26.
14. Люлько А.В., Волкова Л.Н., Суходольская А.Е.Цистит. – 2-е изд., перераб. и доп. – К.: Здоровья, 1988. – 176 с.
15. Машковский М.Д. Лекарственные средства. –16-е изд., перераб., испр. и доп. – М.: Новая волна: Издатель Умеренков, 2010. – 1216 с.
16. Пасечников С.П., Никитин О.Д. Декасан в лечении инфицированных ран после урологических операций // Мистецтво лікування. – 2005.– № 6 (22). – С. 23–26.
17. Переверзев А.С. Инфекции в урологии: Монография. – Харьков.: Факт, 2006. – 352 с.
18. Пиптюк О.В., Чурпій І.К. Обгрунтування використання розчину декасану у хворих з перитонітом // Вісник Вінницького національного медичного університету. – 2010. – № 14 (2). – С. 287–289.
19. Порівняльне дослідження протимікробних властивостей антисептиків / В.М. Мороз, Г.К.Палій, В.О. Соболєв, Н.М. Шевчук, О.М. Заріцький // Вісник Вінницького національного медичного університету. – 2002. – № 2. – С.315–320.
20. Результати експериментального і клінічного дослідження ефективності антисептичногопрепарату декасану / В.П. Ковальчук, М.І. Гуменюк, В.В. Біктіміров, М.Д. Желіба, К.М. Сафронов // Вісник Вінницького національного медичного університету. – 2002. – № 2. – С.292–294.
21. Султанова Е.А. Интерстициальный цистит: некотрые вопросы диагностики и лечения // Русский медицинский журнал. – 2010. – № 29.– 1798–1801.
22. Тиктинский О.Л. Воспалительные неспецифические заболевания мочеполовых органов. – Л.: Медицина, Ленингр. отделение, 1984. –304 с.
23. Урология по Дональду Смиту. Под ред. Э. Танахо, Дж. Маканинча. Пер. с англ. – М., Практика, 2005. – 819 с.
24. Ухаль М.И., Ухаль Е.М. Фитотерапия в лечении хронического персистирующего цистита у больных сахарным диабетом // Медична газета «Здоров’я України». – Березень 2012 р. –№ 5 (282). – С. 64–65.
25. Constantinides C. et al. Prevention of recurrent bacterial cystitis by intravesical administration of hyaluronic acid: a pilot study. – B.J.U.Int., 2004; 93: 426.
26. Droller MJ, Saral K, Santos G: Prevention of cyclophos-phamideinduced hemorrhagic cystitis. Urology, 1982; 20:256.
27. Duncan JL, Schaeffer AJ: Do infectious agents cause interstitial cystitis? Urology, 1997; 49(5ASuppl):48.
28. Levenback C et al.: Hemorragic cystitis following radiotherapy for stage Ib cancer of the cervix. Gynecol. Oncol., 1994; 55:206.
29. Maatman TJ et al.: Radiationinduced cystitis following intracavitary irradiation for superficial bladder cancer. J.Urol., 1983; 130:338.
30. Parsons CL et al.: A quantitatively controlled method to study prospectively interstitial cystitis and demonstrate the efficacy of pentosanpolysulfate. J.Urol., 1993; 150:845.
31. Parsons CL, Mulholland SG: Successful therapy of interstitial cystitis with pentosanpolysulfate. J.Urol., 1987; 138:513.
32. Parsons CL, Schmidt JD, Pollen JJ: Successful treatment of interstitial cystitis with sodium pentosanpolysulfate. J.Urol., 1983; 130:51.
Комментировать